На главную
О введении в действие Методических указаний МУ МЗ ПМР 4.2.2723-15 «Лабораторная диагностика сальмонеллезов. Обнаружение сальмонелл в пищевых продуктах и объектах окружающей среды»
Приказ
№ 228 от 02.04.2015
САЗ 15-17
- 1. Ввести в действие на территории Приднестровской Молдавской Республики методические указания МУ МЗ ПМР 4.2.2723-15 «Лабораторная диагностика сальмонеллезов. Обнаружение сальмонелл в пищевых продуктах и объектах окружающей среды» согласно Приложению к настоящему Приказу.
- 2. Ответственность за исполнение настоящего Приказа возложить на заместителя министра здравоохранения Приднестровской Молдавской Республики Гончар А. Г.
- 3. Контроль за исполнением настоящего Приказа оставляю за собой.
- 4. Настоящий Приказ вступает в силу со дня его официального опубликования.
- Раздел 1. Область применения
- 1. Настоящие методические указания разработаны в соответствии с Законом Приднестровской Молдавской Республики от 3 июня 2008 года № 481-З-IV «О санитарно-эпидемиологическом благополучии населения» (САЗ 08-22) с изменениями и дополнениями, внесенными законами Приднестровской Молдавской Республики от 6 августа 2009 года № 838-ЗИД-IV (САЗ 09-32), от 15 января 2015 года № 18-ЗИ-V (САЗ 15-3) и предназначены для специалистов организаций Государственной санитарно-эпидемиологической службы Министерства здравоохранения Приднестровской Молдавской Республики.
- 2. В настоящих методических указаниях определен порядок проведения лабораторных исследований в целях обнаружения сальмонелл в биологическом субстрате, пищевых продуктах и объектах окружающей среды.
- 3. Настоящие методические указания распространяются только на лаборатории, имеющие право на работу с микроорганизмами III - IV групп патогенности (опасности) и удовлетворяющие требованиям к помещениям и оборудованию в соответствии с санитарно-эпидемиологическими правилами СП МЗ и СЗ ПМР 1.3.2322-11 «Безопасность работы с микроорганизмами III – IV групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных болезней», утвержденными Приказом Министерства здравоохранения и социальной защиты Приднестровской Молдавской Республики от 15 июня 2011 года № 321(регистрационный № 5683 от 12 июля 2011 года) (САЗ 11- 28).
- Раздел 2. Общие положения
- 4. Сальмонеллезы - инфекционные болезни, возбудителями которых являются представители рода Salmonella. Они характеризуются значительным полиморфизмом клинического течения с преимущественным поражением желудочно-кишечного тракта, возможной генерализацией и различной степенью выраженности симптомов общей интоксикации и обезвоживания.
- 5. Лабораторным критерием диагноза является выделение возбудителя (сальмонеллы) из испражнений, мочи, крови, рвотных масс и промывных вод больных, а при необходимости и наличии специальных показаний и из желчи, дуоденального содержимого, спинномозговой жидкости и секционного материала.
- 6. Исследование на сальмонеллез проводят с целью:
- Раздел 3. Таксономия и культурально-ферментативные свойства сальмонелл
- 7. Род Salmonella входит в семейство Enterobacteriaceae и состоит из микроорганизмов, родственных по фенотипическим и генотипическим свойствам. Ферментативные свойства сальмонелл положены в основу их подразделения на подвиды. Согласно последним данным, род Salmonella представлен двумя видами - S.enterica и S.bongori.
- 8. Сальмонеллы вида S.enterica делятся на подвиды и обозначаются следующими символами:
- 9. Сальмонеллы - лактозонегативные грамотрицательные палочки. Подвижные, имеют перитрихиальные (по всей поверхности клетки) жгутики, за исключением S.Gallinarum. D-глюкозу ферментируют с образованием кислоты и газа (S.Typhi газа не образуют). Ферментируют рамнозу, ксилозу, арабинозу, мальтозу, дульцит, сорбит, трегалозу, маннит. Сальмонеллы - оксидазонегативные, каталазопозитивные, индол и Фогес-Проскауэр (VP) негативные, метиловый красный и цитрат позитивные, продуцируют сероводород и не расщепляют мочевину.
- 10. Факторами передачи возбудителей инфекции при сальмонеллезах являются, как правило, продукты животного происхождения, в том числе молоко и молочные продукты. В настоящее время чаще всего заболевания возникают при употреблении в пищу инфицированных яиц или продуктов, в состав которых входят яйца, в том числе кремово-кондитерских изделий. Ряд заболеваний связан с инфицированным сальмонеллами мясом и мясопродуктами. Чаще всего это мясо домашних птиц (куры, утки, гуси, индейки), а также крупного рогатого скота и свинина, которые нередко являются причиной заболевания людей сальмонеллезом.
- 11. В настоящее время известен ряд схем, используемых в различных странах для выделения сальмонелл. В идеале для этого должны быть выбраны высокочувствительные и специфичные методы. В то же время эти методы должны быть простыми, быстрыми и недорогими.
- Раздел 4. Исследование клинического материала
- Глава 1. Взятие материала и его транспортировка
- Глава 2. Подготовка к исследованию клинического материала
- 13. Доставленные в лабораторию образцы клинического материала подготавливают к посеву в среды обогащения и на дифференциально-диагностические среды.
- 14. Операционный и секционный материал массой не менее 20 г растирают в ступках.
- 15. Рвотные массы, промывные воды желудка и мочу центрифугируют. При кислой реакции (pH < 4,5) рвотные массы перед центрифугированием нейтрализуют 10 %-ным раствором питьевой соды (pH от 7,0 до 7,4).
- Глава 3. Методы выделения
- 16. Эффективность проводимого исследования, направленного на выделение сальмонелл из разных материалов, в первую очередь зависит от применения соответствующих сред обогащения и адекватных дифференциально-диагностических сред.
- 17. В настоящее время освоен коммерческий выпуск большинства питательных сред рядом производителей, имеющих регистрационные удостоверения и сертификаты производства. В тех случаях, когда рекомендуемые среды отсутствуют, их готовят в лабораторных условиях в соответствии с ГОСТ ISO 11133-1-2011 «Микробиология пищевых продуктов и кормов для животных. Руководящие указания по приготовлению и производству культурных сред. Часть 1. Общие руководящие указания по обеспечению качества приготовления культурных сред в лаборатории», введенным в действие Приказом Государственной службы энергетики и жилищно-коммунального хозяйства Приднестровской Молдавской Республики от 19 августа 2014 га № 331 «О введении в действие и отмене нормативных документов по стандартизации на территории Приднестровской Молдавской Республики» (газета «Приднестровье» от 28 августа 2014 года № 200-201); МУ МЗ СЗ ПМР № 04-23/3-2003 «Методические указания по микробиологической диагностике заболеваний, вызываемых энтеробактериями», утвержденными Приказом Министерства здравоохранения и социальной защиты Приднестровской Молдавской Республики от 4 сентября 2003 года № 519 «О введении в действие нормативных документов на территории Приднестровской Молдавской Республики» (регистрационный № 2676 от 23 марта 2004 года) (САЗ 04-13). Контроль питательных сред осуществляют в соответствии с МУК МЗ и СЗ ПМР 4.2.011-12 «Бактериологический контроль питательных сред», утвержденными Приказом Министерства здравоохранения и социальной защиты Приднестровской Молдавской Республики от 15 октября 2012 года № 535 (САЗ 12-45).
- 18. Характер роста сальмонелл на средах, указанных в пункте 17 настоящих методических указаний, приводится в таблице № 2 настоящих методических указаний:
- 19. После подготовки материала от больных к исследованию производят его посев на среду обогащения. При этом можно использовать как среды отечественного производства, так и импортные, разрешенные к реализации на территории Приднестровской Молдавской Республики, – среды промышленного изготовления. При необходимости допускается приготовление некоторых сред в лабораторных условиях (магниевая среда, селенитовая среда, Мюллер-Кауфман среда, среда Раппапорт-Василиадис).
- 20. Испражнения, доставленные в фосфатно-буферном растворе, высевают в среду обогащения двойной концентрации в соотношении 1:1. Фекалии, доставленные в глицериновом консерванте или транспортной среде, помещают в обычную среду обогащения в соотношении 1:10. Испражнения, доставленные без консерванта, суспендируют в среде обогащения в соотношении 1:5. Из указанных суспензий делают высев на дифференциально-диагностические среды, оставшуюся часть инкубируют в термостате.
- 21. Кровь, взятую из вены, высевают в двойную среду; в случае крайней необходимости - в желчный бульон с концентрацией от 10 % до 20 %. После проведения от 16 часов до 20 часов инкубирования делают высев на одну из дифференциально-диагностических сред. При отрицательном результате делают повторные посевы на третьи, пятые, восьмые сутки.
- 22. Рвотные массы, промывные воды желудка и мочу после центрифугирования высевают в среды обогащения. В случае исследования материала без центрифугирования посев проводят в среду обогащения двойной концентрации в соотношении 1:1 и после проведения от 18 часов до 24 часов инкубирования делают высев на дифференциально-диагностические среды.
- 23. Каждую фракцию желчи (дуоденального содержимого) высевают во флаконы со слабощелочным питательным бульоном в соотношении 1:10 и на дифференциально-диагностические среды. Через период от 18 часов до 24 часов из флаконов осуществляют повторный высев на дифференциально-диагностические среды. В случае получения отрицательных результатов высев повторяют на третьи, пятые и седьмые сутки, используя среды слабой селективности.
- 24. Спинномозговую жидкость высевают на шоколадный агар.
- 25. Операционный и секционный материал высевают в одну из сред обогащения в отношении 1:10. Допускается одновременный высев суспензии материала в среду обогащения и на дифференциально-диагностические среды.
- 26. При наличии другого клинического материала его высевают на две-три дифференциально-диагностические среды (комбинируя высоко - и низкоселективные среды и в емкости со средой обогащения одновременно).
- 27. При посеве на плотные среды исследуемый материал наносят с помощью бактериологической петли (материал от больных), пипетки, стеклянной палочки или тампона (пробы продуктов и смывы) с последующим втиранием материала шпателем по всей поверхности среды. На высокоселективные среды посевной материал вносят в большем объеме (от 3 раз до 5 раз), чем на слабо селективные среды.
- 28. После инкубирования посевов на средах обогащения делается повторный высев на дифференциально-диагностические среды с последующим отбором подозрительных колоний.
- Раздел 5. Исследование пищевых продуктов
- Глава 4. Взятие проб и их транспортировка
- 29. Объектами исследования могут являться:
- 30. Пробы для исследования отбирают в соответствии с государственными стандартами: ГОСТ 26668-85 «Продукты пищевые и вкусовые. Методы отбора проб для микробиологических анализов», введенным в действие Приказом Министерства промышленности Приднестровской Молдавской Республики от 29 ноября 2002 года № 483 «О введении в действие межгосударственных стандартов на территории Приднестровской Молдавской Республики (с ГОСТ 25749-83 по ГОСТ 26858-86)» (регистрационный № 1892 от 5 декабря 2002 года) (САЗ 02-49); ГОСТ 9792-73 «Колбасные изделия и продукты из свинины, баранины, говядины и мяса других видов убойных животных и птиц. Правила приемки и методы отбора проб», введенным в действие Приказом Министерства промышленности Приднестровской Молдавской Республики от 19 февраля 2003 года № 74 «О введении действие межгосударственных стандартов на территории Приднестровской Молдавской Республики (с ГОСТ 8709-82 по ГОСТ 9999-94)» (регистрационный № 2032 от 4 марта 2003 года) (САЗ 03-10); ГОСТ 7702.0-74 «Мясо птицы. Методы отбора образцов. Органолептические методы оценки качества», ГОСТ 7702.2.0-95 «Мясо птицы, субпродукты и полуфабрикаты птичьи. Методы отбора проб и подготовка к микробиологическим исследованиям», введенными в действие Приказом Министерства промышленности Приднестровской Молдавской Республики от 19 февраля 2003 года № 71 «О введении в действие межгосударственных стандартов на террритории Приднестровской Молдавской Республики (с ГОСТ 7634-75 по ГОСТ 8705-78)» (регистрационный № 2019 от 27 февраля 2003 года) (САЗ 03-9).
- 31. Остатки консервов направляют в лабораторию непосредственно в той банке, из которой их использовали в пищу. При отсутствии остатков консервов исследованию подлежит содержимое от 2 невскрытых банок до 5 невскрытых банок с аналогичной маркировкой.
- 32. Мелкую рыбу отбирают в количестве от 2 штук до 3 штук, у крупной рыбы вырезают от 3 кусков до 4 кусков из спинки, ближе к голове, и из участков около анального отверстия общей массой не менее 200 г.
- 33. Солонину и соленые продукты, находящиеся в бочечной таре, берут сверху, из середины и со дна бочки. Общая масса пробы должна быть не менее 200 г. В отдельную посуду набирают от 100 см3 до 200 рассола.
- 34. Пробы жидких и полужидких продуктов и кормов (супы, соусы, заменитель цельного молока) отбирают после тщательного перемешивания в количестве около 200 г.
- 35. Молочные продукты заводского приготовления доставляют в лабораторию в оригинальной упаковке, прочие - в объеме до 200 см3.
- 36. Суточные пробы направляют для исследования непосредственно в той посуде, в которой они хранились в холодильнике. Остатки фактически употребленной пищи отбирают в той посуде, в которой их обнаружили.
- 37. Яйца отбирают по 5 штук из шести разных мест обследуемой партии; в первую очередь берут яйца, хранившиеся более 7 дней.
- 38. Материал, подлежащий исследованию, помещают в стерильную посуду (банки, пробирки, флаконы), новые полиэтиленовые пакеты, стерильную пергаментную бумагу, тщательно укупоривают и упаковывают. Пробы можно брать в стерильные одноразовые емкости.
- 39. Каждую пробу снабжают этикеткой с наименованием материала и источника его получения.
- Глава 5. Подготовка к исследованию
- 40. При исследовании пищевых продуктов делают навеску. Величина навески определяется видом продукта, масса которого должна соответствовать величине норматива на отсутствие в нем бактерий рода сальмонелла. Чаще всего масса навески составляет 25 г.
- 41. Продукты плотной консистенции гомогенизируют или растирают в ступках.
- 42. Пищевые продукты, бактериологическое исследование которых проводят в соответствии с требованиями МУК МЗ и СЗ ПМР 4.2.577-12 «Методы микробиологического контроля продуктов детского, лечебного питания и их компонентов», утвержденных Приказом Министерства здравоохранения и социальной защиты Приднестровской Молдавской Республики от 13 декабря 2012 года № 675 (САЗ 13-7); ГОСТ 30705-2000 «Продукты молочные для детского питания. Методы микробиологического анализа». Метод определения общего количества мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов», введенного в действие Приказом Министерства промышленности Приднестровской Молдавской Республики от 4 августа 2003 года № 334 «О введении в действие межгосударственных стандартов на террритории Приднестровской Молдавской Республики» (регистрационный № 2325 от 8 августа 2003 года) (САЗ 03-32), берут для исследования в количестве, предусмотренном в указанных нормативных правовых актах.
- 43. Крем, сливочное масло, мороженое перед посевом расплавляют в водяной бане.
- 44. Жидкие продукты, имеющие кислую реакцию (pH меньше 4,5), перед посевом нейтрализуют 10 %-ным стерильным раствором бикарбоната натрия до слабощелочной реакции (pH от 7,0 до 7,4).
- 45. При исследовании яиц скорлупу обрабатывают спиртом и обжигают, после чего яйца разбивают и отделяют желток и белок в стерильную посуду, объединяя (отдельно) по пять желтков и белков в одной пробе. Желтки и белки гомогенизируют и используют для посева.
- Глава 6. Методы выделения
- Раздел 6. Исследование объектов окружающей среды
- Глава 7. Взятие проб и их транспортировка
- 48. Основными объектами окружающей среды, подлежащими исследованию на наличие сальмонелл, являются смывы с различных предметов на эпидемиологически значимых объектах и в лечебно-профилактических организациях, а также вода (питьевая, открытых водоисточников, сточная), воздух и почва.
- 49. Отбор проб смывов осуществляют стерильными ватными или ватно-марлевыми тампонами. Тампоны монтируют на деревянной палочке или проволоке, пропущенной через пробку, помещают в пробирку и стерилизуют 30 минут при температуре 120 °C. Затем в каждую пробирку наливают 2 см3 предварительной среды обогащения - забуференной пептонной воды pH 7,0. Непосредственно перед взятием смыва тампон увлажняют, наклоняя пробирку, излишек влаги отжимают о стенку пробирки.
- 50. Для отбора проб воды используют стерильные флаконы вместимостью 0,5 дм3 с притертой, каучуковой или корковой пробкой.
- 51. Анализ почвы на наличие сальмонелл проводят по эпидемиологическим показаниям. Навеску в 50 г помещают в среду неселективного обогащения в соотношении 1:10, и дальнейшее исследование выполняют аналогично пищевым продуктам.
- 52. Отбор проб воздуха.
- Глава 8. Подготовка к исследованию
- Глава 9. Методы выделения
- 55. При исследовании смывов после высева на среду Кесслера смывную жидкость заливают 5 см3 одной из рекомендуемых для выделения сальмонелл сред обогащения (магниевая, селенитовая или среда Раппапорт-Василиадис) и помещают в термостат при температуре 37°C на инкубацию от 18 часов до 20 часов. После инкубации делают высев на среду Эндо и висмут-сульфит агар с последующим отбором подозрительных колоний и их идентификацией.
- 56. При исследовании воды питьевой, поверхностных водных объектов и сточных вод берутся 2 пробы по 500 см3 каждая и вносятся в равный объем селективной среды обогащения двойной концентрации. При использовании мембранной фильтрации для исследования полученные фильтры помещают в 50 см3 в каждой из двух сред накопления, например, магниевую и селенитовую, или среду Раппапорт-Василиадис и селенитовую.
- 57. При исследовании воздуха, после отбора проб, чашки с агаром Эндо помещают в термостат при температуре 37°C на инкубацию от 18 часов до 20 часов, а чашки с висмут-сульфит агаром инкубируют при той же температуре 48 часов.
- Раздел 7. Идентификация сальмонелл
- Глава 10. Определение ферментативных свойств выделенных микроорганизмов
- 58. После инкубирования от 18 часов до 20 часов чашек с дифференциально-диагностическими средами (висмут-сульфит агар 48 часов) производится учет характера роста с отбором от 3 подозрительных колоний до 5 подозрительных колоний на одну из сред для первичной идентификации (Клиглера, Ресселя, Олькеницкого) и на скошенный питательный агар. В случае чрезвычайной эпидемической ситуации культуру, выросшую на указанных средах, используют для последующей постановки реакции агглютинации. Результаты этой реакции ориентировочны и требуют подтверждения на этапе завершения биохимической идентификации.
- 59. Если культуры не ферментируют лактозу, не расщепляют мочевину, но ферментируют глюкозу и образуют сероводород, то они подозрительны на принадлежность к роду сальмонелла и подвергаются дальнейшему изучению.
- 60. В случае, если в результате прямого посева испражнений не выросло ни одной колонии или выросли единичные колонии, необходимо произвести повторный высев, увеличив порцию засеваемого материала. При повторном отсутствии роста следует получить материал для исследования еще раз.
- 61. У подозрительных культур изучают их ферментативные характеристики, позволяющие определить родовую принадлежность выделенных бактерий. Для этих целей используют тесты, позволяющие определить способность к образованию индола, наличие роста на средах с цитратами, разложение салицина и малоната натрия, наличие лизин-декарбоксилазы, фенилаланиндезаминазы, способность к разложению мочевины, образованию ацетил-метил-карбинола в реакции Фогес-Проскауэра. Ставится также проба с метиловым красным и определяется подвижность.
- 62. Сальмонеллы индола не образуют, способны расти на средах с цитратами, декарбоксилировать лизин (за исключением некоторых штаммов S.Typhimurium, S.Enteritidis), не имеют фенилаланиндезаминазы, не разлагают мочевину, отрицательны в реакции Фогес-Проскауэра, положительны в пробе с метил-рот, подвижны (за исключением S.Gallinarum). Подавляющее большинство сальмонелл не ферментируют салицин.
- 63. Для определения родовой принадлежности культур можно использовать системы для идентификации энтеробактерий, в том числе пластины биохимические, дифференцирующие энтеробактерий, Api20E, Бак трак, Vidas, mini-Vidas и другие приборы, прошедшие соответствующие испытания и разрешенные к применению на территории Приднестровской Молдавкой Республики.
- 64. Серотипирование штаммов сальмонелл включает в себя выявление соматического антигена (O-антигены сальмонелл), являющегося липополисахаридом, и жгутиковых антигенов (H-антигены), представленных термолабильными белками. Большинство сероваров сальмонелл имеют H-антигены двух фаз. Такие сальмонеллы называются двуфазными (например - S.Typhimurium, антигенная формула - O: 1, 4, 5, 12; H: i; 1.2). Известны монофазные сальмонеллы (например - S.Enteritidis, антигенная формула - O: 1, 9, 12; H: gm) и неподвижные (бесфазные) - S.Gallinarum.
- Глава 11. Определение O-антигенов выделенных микроорганизмов
- 65. Определение O-антигена проводится в реакции агглютинации на стекле. В сыворотке находятся антитела к O-антигенам сальмонелл, которые образуют агглютинат с бактериями, обладающими соответствующими антигенами.
- 66. Агглютинация проявляется через несколько секунд (или 1 минуту) в виде хлопьев (зерен) агглютината, формирующихся внутри капли на фоне ее просветления. Штаммы, находящиеся в R-форме, обладают самопроизвольной агглютинацией. Их дальнейшее серотипирование не представляется возможным без дополнительных манипуляций. Такие штаммы пересевают на слабощелочной агар для того, чтобы выбрать колонию с ровными краями и вернуть штамм в S-(гладкую) форму и повторить агглютинацию. Если агглютинация с поливалентными O-антисыворотками не происходит, маловероятно, что штамм относится к роду Salmonella.
- Глава 12. Определение H-антигена выделенных микроорганизмов
- 67. Для определения H-антигенов используют ту же культуру, выросшую на питательном агаре. Если культура малоподвижна, можно применять полужидкий (0,7 %) агар, условно называемый агаром для роения, формируя посев в виде небольшого пятна в центре чашки Петри. Посев инкубируют в течение ночи при температуре 37°C.
- 68. Результаты определения O- и H-антигенов сальмонелл фиксируются в протоколе исследований. В случае отсутствия реакции агглютинации с сыворотками одной из H-фаз проводят инверсию (подавление) обнаруженной H-фазы (метод Свена-Гарда).
- 69. Серологическую идентификацию сальмонелл начинают с испытания их в реакции агглютинации на стекле с агглютинирующей адсорбированной поливалентной сывороткой к сальмонеллам групп А, В, С, Д, Е, а в случае получения отрицательного результата - с агглютинирующей адсорбированной поливалентной сывороткой к сальмонеллам редких групп.
- 70. Для подтверждения принадлежности культуры к роду Salmonella в случае затруднений с идентификацией можно пользоваться пробой с бактериофагом, используя лечебный бактериофаг сальмонеллезный.
- Глава 13. Определение биоваров сальмонелл
- 71. В пределах некоторых сероваров сальмонелл наблюдается различная ферментативная активность в отношении отдельных углеводов, органических кислот или многоатомных спиртов. Это позволяет проводить биохимическое типирование штаммов сальмонелл, относящихся к таким сероварам.
- 72. Типирование можно осуществлять по любой комбинации тестов, по отношению к которым выявлены вариабельные свойства у штаммов одного серовара.
- 73. В настоящее время типирование среди S.Enteritidis проводят по способности к ферментации бульона Штерна и наличию лизиндекарбоксилазы. S.Enteritidis var. ratin характеризуется отсутствием указанных ферментов, а S.Enteritidis var. jena - их наличием.
- Раздел 8. Серологические методы исследования для диагностики сальмонеллезов и выявления различных форм бактерионосительства
- 74. В дополнение к микробиологическому методу диагностики в качестве ориентировочных во время вспышек могут быть использованы клинический, эпидемиологический, серологический и молекулярно-генетический методы. Эпидемиологическим подтверждением постановки диагноза является наличие вспышки при условии, что указанный больной подвергался воздействию выявленного фактора риска, а клиническим - обнаружение клинической картины сальмонеллеза.
- 75. Использование реакции пассивной гемаггютинации (далее - РПГА) для диагностики сальмонеллезов имеет вспомогательное значение, так как в крови практически здоровых людей могут присутствовать антитела к антигенам сальмонелл. Вследствие этого понятие «диагностического титра» антител носит весьма условный ориентировочный характер. Следует учитывать и то, что для разных районов страны величина «диагностического титра» будет различной, что связано с территориальными особенностями эпидемической ситуации. Существенно большее диагностическое значение имеет нарастание уровня антител в динамике заболевания, для чего сыворотку нужно брать сразу после выявления больного, а затем в конце первой или в начале второй недели болезни. В более поздние сроки заболевания титр антител снижается, что также может служить диагностическим критерием.
- 76. При серологической диагностике сальмонеллезов большое диагностическое значение имеют иммуноглобулины, образование которых обусловливает нарастание титра антител в крови лиц, инфицированных сальмонеллами в определенные периоды жизни. При этом наиболее специфичны в диагностическом плане IgG-антитела. Вместе с тем IgM-антитела появляются в крови раньше других. Они могут образовываться и у здоровых лиц в результате «бытовой» иммунизации или вследствие ранее перенесенной инфекции, то есть IgM-антитела менее специфичны.
- 77. Порядок исследования крови человека:
- 78. Уровень антител в крови детей приводится в таблице № 4 настоящих методических указаний:
- 79. Постановка РПГА.
- 80. Определение антител в РПГА без цистеина.
- 81. Определение антител в РПГА с цистеином.
- 82. Учет РПГА и интерпретация результатов.
Реквизиты документа
Полное наименование
О введении в действие Методических указаний МУ МЗ ПМР 4.2.2723-15 «Лабораторная диагностика сальмонеллезов. Обнаружение сальмонелл в пищевых продуктах и объектах окружающей среды»
Издатель
Министерство здравоохранения
Вид акта
Приказ
№ документа
№ 228
Редакция
Первоначальный документ
Дата документа
02.04.2015
Источник оф. опубликования
САЗ 15-17
Скачать
Доступно по тарифу
К карточке документа
Карточка документа
О введении в действие Методических указаний МУ МЗ ПМР 4.2.2723-15 «Лабораторная диагностика сальмонеллезов. Обнаружение сальмонелл в пищевых продуктах и объектах окружающей среды»
Тип:
Приказ
Номер:
№ 228
Статус:
Опубликован
Редакция:
Первоначальный документ
Организация:
Министерство здравоохранения
Дата:
02.04.2015