На главную
Об утверждении Инструкции МЗ и СЗ ПМР № 5319-12 «Санитарно-микробиологический контроль производства пищевой продукции из рыбы и морских беспозвоночных»
Приказ
№ 486 от 18.09.2012
САЗ 12-42
- 1. Утвердить Инструкцию МЗ и СЗ ПМР № 5319-12 «Санитарно-микробиологический контроль производства пищевой продукции из рыбы и морских беспозвоночных» (прилагается).
- 2. Считать утратившим силу подпункт 18 подпункта «г» пункта 1 Приказа Министерства здравоохранения и социальной защиты Приднестровской Молдавской Республики от 23 сентября 2002 года № 773 «О введении нормативных документов по гигиене питания на территории Приднестровской Молдавской Республики» (регистрационный № 1856 от 21 ноября 2002 года) (САЗ 02-47) с изменениями, внесенными приказами Министерства здравоохранения и социальной защиты Приднестровской Молдавской Республики от 24 сентября 2004 года № 520 (регистрационный № 2966 от 20 октября 2004 года) (САЗ 04-43), от 5 февраля 2007 года № 79 (регистрационный № 3847 от 2 марта 2007 года) (САЗ 07-10), от 26 июня 2008 года № 354 (регистрационный № 4641 от 11 декабря 2008 года) (САЗ 08-49), от 26 июня 2008 года № 353 (регистрационный № 4645 от 12 декабря 2008 года) (САЗ 08-49), от 7 декабря 2010 года № 618 (регистрационный № 5512 от 30 декабря 2010 года) (САЗ 11-1), от 17 января 2011 года № 9 (регистрационный № 5562 от 18 марта 2011 года) (САЗ 11-11), от 13 июня 2011 года № 314 (регистрационный № 5691 от 20 июля 2011 года) (САЗ 11-29).
- 3. Контроль за исполнением настоящего Приказа возложить на Главного врача ГУ «Республиканский центр гигиены и эпидемиологии» - Печул А.С.
- 4. Настоящий Приказ вступает в силу со дня официального опубликования.
- 1. Общие положения
- 1. Настоящая Инструкция разработана в соответствии со статьей 38 Закона Приднестровской Молдавской Республики от 3 июня 2008 года № 481-З-IV «О санитарно-эпидемиологическом благополучии населения» (САЗ 08-22), с изменениями и дополнениями, внесенными Законом Приднестровской Молдавской Республики от 6 августа 2009 года № 838-ЗИД-IV (САЗ 09-32) и предназначена для производственных микробиологических лабораторий рыбной промышленности и учреждений Государственной санитарно-эпидемиологической службы Приднестровской Молдавской Республики (далее - Госсанэпидслужба).
- 2. Инструкция предусматривает контроль за выпуском доброкачественной, безопасной в эпидемиологическом отношении пищевой продукции из рыбы и нерыбных объектов морского промысла.
- 3. Доброкачественность готового продукта в микробиологическом отношении в значительной степени зависит от санитарного уровня производства и микробиологической характеристики сырья и вспомогательных материалов, от четко организованного санитарно-микробиологического контроля (Приложение № 1 к настоящей Инструкции).
- 4. В Инструкции представлен санитарно-микробиологический контроль кулинарного, икорного, коптильного производств, производства вяленой и соленой продукции, в том числе пресервов, производства белковых продуктов и продуктов переработки водорослей.
- 5. Нормативные показатели микробиологической обсемененности характеризуют уровень санитарного состояния производства, правильность ведения технологического процесса, помогают выявить возможные нарушения при производстве продукции.
- 6. Санитарно-микробиологический контроль подразделяется на основной (профилактический) и дополнительный.
- 8. Дополнительный микробиологический контроль продуктов проводится в случае стойкой повышенной обсемененности готового продукта с целью обнаружения и устранения источника обсеменения, а также по решению заведующего лабораторией, старшего бактериолога по санитарно-микробиологическим показаниям, при отклонении от технологического процесса или по требованию заказчика.
- 9. Вопрос о реализации готовой продукции с повышенной обсемененностью решает руководство организации-изготовителя по согласованию с учреждениями Госсанэпидслужбы.
- 10. При микробиологическом контроле в зависимости от его назначения определяют следующие группы микроорганизмов: мезофильные аэробные и факультативно-анаэробные микроорганизмы (далее - КМАФАнМ), бактерии группы кишечных палочек (далее - БГКП) колиформные, золотистые стафилококки, сульфитредуцирующие клостридии, плесневые грибы и дрожжи, бактерии рода протея, патогенные микроорганизмы, в том числе сальмонеллы и парагемолитические вибрионы.
- 11. Анализы по выявлению в рыбопродукции сальмонелл и парагемолитических вибрионов выполняются лабораториями Госсанэпидслужбы на договорной основе, а также в порядке Госсанэпиднадзора и по эпидемиологическим показаниям. Парагемолитические вибрионы контролируются только по эпидемиологическим показаниям и при экологическом неблагополучии водного бассейна региона лова гидробионтов.
- 12. Кроме микробиологического контроля осуществляется ежедневный визуальный контроль сырья и вспомогательных материалов, идущих на технологические операции, и контроль санитарного состояния организации согласно настоящей Инструкции.
- 13. За чистоту оборудования, инвентаря, тары в цехе, за обеспечение дезинфицирующими средствами, за качество используемого сырья и вспомогательных материалов отвечает мастер смены.
- 14. Результаты санитарно-микробиологических анализов немедленно доводятся до сведения мастера смены, заведующего лабораторией и руководства организации для принятия мер по улучшению санитарного и технического уровня производства.
- 15. В инструкции приводятся нормативы бактериальной обсемененности сырья, полуфабрикатов, вспомогательных материалов, готовой продукции, периодичность контроля, методы микробиологических анализов, рекомендации по устранению недостатков.
- 16. Сырье, полуфабрикаты, из которых изготавливается рыбная продукция, должны соответствовать требованиям отраслевых стандартов, технических условий и технологических инструкций, где определяются требования к качеству сырья, полуфабрикатов и готовых изделий, правила упаковки и транспортировки, условия и сроки хранения. Сроки, условия хранения, транспортировка также предусмотрены СанПиН МЗ и СЗ ПМР 2.3.2.1324-06 «Гигиенические требования к срокам годности и условиям хранения пищевых продуктов», утвержденными Приказом Министерства здравоохранения и социальной защиты Приднестровской Молдавской Республики от 15 августа 2006 года № 367 «О введении в действие санитарно-эпидемиологических правил» (регистрационный № 3708 от 9 октября 2006 года) (САЗ 06-42).
- 2. Контроль санитарного состояния производства
- 17. Соблюдение норм и требований производственной санитарии является одним из основных условий выпуска доброкачественной продукции.
- 18. Санитарное состояние производства и эффективность проведенных санитарных мероприятий контролируются бактериологом ежедневно визуально перед началом работы и после санитарной обработки, а также путем периодического проведения комплекса микробиологических анализов, включающих проверку санитарного состояния технологического оборудования, тары, воды, воздуха и рук рабочих, соприкасающихся с продуктом (Таблица № 1).
- 19. Отбор проб и анализ смывов.
- 20. Смывы с крупного оборудования и инвентаря, металлических банок вместимостью более 500 см3, металлических коробов, деревянных ящиков, бочек, полотняных салфеток, стен камер, где проводится вяление и упаковка вяленой продукции, берут с внутренней поверхности со 100 см2 с помощью шаблона (трафарета), сделанного из проволоки. Смоченным ватным тампоном или марлевой салфеткой обтирают поверхность, ограниченную шаблоном, во взаимно перпендикулярных направлениях.
- 21. При взятии смывов с мелкого инвентаря обтирают всю внутреннюю поверхность предмета.
- 22. После взятия смыва тампон вновь погружают в пробирку со стерильной жидкостью, встряхивают и дают отстояться 2-3 минуты. Из полученного материала отбирают 1 см3 для определения общего микробного числа и, если требуется, 1 см2 для определения наличия плесневых грибов. Для определения БГКП оставшуюся смывную жидкость вносят в 5 см3 среды Кесслер.
- 23. Дальнейший ход анализа проводят в соответствии с методами микробиологических анализов настоящей Инструкции.
- 24. Смыв с банок вместимостью менее 500 см3 производят 10 см2 стерильной жидкости, закрывают крышкой, встряхивают. Затем делают разведение 1 : 10 и высевают. В 1 см3 смыва с банки не должно содержаться более 5 клеток микроорганизмов.
- 25. При обследовании трубопроводов и другого оборудования, где невозможно применить шаблон, проводится микробиологический анализ последних порций промывных вод (около 100 см3), взятых после мойки оборудования; 1 см3 промывных вод или тампон после взятия смыва, в случае анализа только на БГКП, помещают в 5 см3 среды Кесслер. Дальнейший ход анализа описан в разделе по определению бактерий группы кишечных палочек (колиформных бактерий). Кроме того, в 100 см3 промывных вод рыбоконцентратного производства должны отсутствовать сульфитредуцирующие клостридии. Для этого в 500 см3 прогретой среды Китт-Тароцци вносят 100 см3 промывных вод. Дальнейший ход анализа описан в разделе по определению спор мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов (термостабильных бацилл мезофиллов).
- 26. При взятии смывов с рук увлажненным стерильной жидкостью тампоном протирают ладонные поверхности обеих рук сначала вдоль, потом поперек, затем межпальцевые пространства, ногти и подногтевые пространства. С перчаток берут смывы только со стороны ладоней. Тампон погружают в 5 см3 среды Кесслер.
- 27. В воздухе помещений, где производится охлаждение, упаковка готового продукта, определяют количество мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов и количество спор плесневых грибов. Воздух обследуется седиментационным или аспирационным методами. Сущность седиментационного метода заключается в том, что чашки Петри с питательным агаром (для определения КМАФАнМ) и средой Сабуро (для определения количества колоний плесневых грибов) оставляют открытыми в течение 20 минут в трех местах обследуемого помещения, затем закрывают и инкубируют в первом случае при температуре 30°С в течение 72 часов, во втором - при температуре 25°С в течение 5 суток. Воздух считается практически чистым, если на чашках с питательным агаром выросло в среднем до 200 колоний и на среде Сабуро - до 20 колоний проросших спор плесневых грибов.
- 28. При обследовании воздуха аспирационным методом используют приборы для бактериологического анализа воздуха. Воздух считается практически чистым, если при просасывании 100 дм3 воздуха на чашках с питательным агаром вырастает не более 150 колоний и на среде Сабуро - до 15 колоний проросших спор плесневых грибов.
- 29. Вода, лед, используемые при производстве рыбопродукции, должны отвечать требованиям, предъявляемым к питьевой воде по микробиологическим показателям.
- 30. Контроль за качеством воды по микробиологическим показателям проводится с определенной периодичностью лабораториями организации. В воде определяют количество мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных бактерий и бактерий группы кишечных палочек в соответствии с СанПиН МЗ и СЗ ПМР 2.1.4.1074-07 «Питьевая вода. Гигиенические требования к качеству воды централизованных систем питьевого водоснабжения. Контроль качества», утвержденными Приказом Министерства здравоохранения и социальной защиты Приднестровской Молдавской Республики от 12 апреля 2007 года № 222 (регистрационный № 3928 от 17 мая 2007 года) (САЗ 07-21)(далее - СанПиН МЗ и СЗ ПМР 2.1.4.1074-07 «Питьевая вода. Гигиенические требования к качеству воды централизованных систем питьевого водоснабжения. Контроль качества»).
- 31. Если результаты санитарно-микробиологического контроля не соответствуют показателям, приведенным в Таблице № 1, проводится повторная санитарная обработка. Особое внимание следует уделять санитарному состоянию оборудования, которое соприкасается с готовым продуктом и полуфабрикатами после их термической обработки, а в производстве белковых продуктов - с полуфабрикатом после коагуляции (охладители, шелушители, флотаторы, прессы, волчок и другие). Для снижения обсемененности термофильной микрофлорой при санитарной обработке оборудования применяют дезинфицирующие средства, разрешенные для этих целей на территории Приднестровской Молдавской Республики. При повышенном содержании сульфитредуцирующих клостридий в смывной жидкости при анализе производства белковых продуктов необходимо выявить источник загрязнения. Систему трубопроводов дополнительно промыть горячей водой с моющим средством и продезинфицировать острым паром в течение 40 минут.
- 32. При появлении плесневых грибов на стенах, потолке и в углах производственных цехов необходимо провести механическую очистку с последующей покраской или побелкой с добавлением в раствор 1 % хлорной извести.
- 33. При повышенной обсемененности воздуха помещение следует обработать бактерицидными лампами после окончания или за 2 часа до начала работы.
- 3. Контроль сырья (свежей, охлажденной, мороженой рыбы и морских беспозвоночных)
- 34. Качество свежей, охлажденной и мороженой рыбы и морских беспозвоночных контролируют визуально при поступлении их на рыбообрабатывающую организацию и ежедневно.
- 35. Если доброкачественность рыбного сырья вызывает сомнение, то для объективной оценки проводят исследование мазков-отпечатков. Для этого кожу рыбы посередине спины или ближе к голове освобождают от чешуи и прижигают раскаленным скальпелем, затем стерильным скальпелем вырезают кусочки мяса рыбы площадью около 1,5 см2 и толщиной 1,5 мм-2,0 мм. Кусочком мяса делают отпечаток на стерильном предметном стекле. Отпечаток мышечной ткани фиксируют, проводя 3 раза над пламенем горелки, окрашивают любым красителем и просматривают под микроскопом не менее 10 полей зрения (увеличение x 900). В поле зрения микроскопа в мазке-отпечатке ткани рыбы, пригодной к употреблению, должно содержаться не более 10 клеток микроорганизмов.
- 36. При стойкой повышенной обсемененности готовой продукции для выявления источника обсеменения проводят микробиологический анализ сырья. Контроль включает определение в сырье количества мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов. По требованию заказчика и эпидемиологическим показаниям дополнительно определяют наличие бактерий группы кишечных палочек, золотистых стафилококков, сальмонелл и парагемолитических вибрионов.
- 37. Микробиологические анализы рыбы и морских беспозвоночных в свежем, охлажденном и мороженом виде, целых и разделанных, используемых при производстве продукции, проводят при дополнительном контроле (Таблица № 2).
- 38. Количество парагемолитических вибрионов в сырье не должно превышать 10 КОЕ/г. Допускается присутствие вибрионов до 500 КОЕ/г при условии направления сырья на изготовление продуктов с термической обработкой, замораживание, крепкий посол (свыше 10 % NaCl).
- 39. Парагемолитические вибрионы должны отсутствовать в 25 г морских беспозвоночных, подготовленных к реализации в живом виде.
- 4. Контроль кулинарных изделий
- 40. Как правило, кулинарные изделия полностью подготовлены к употреблению в пищу, но некоторые из них требуют дополнительной термической обработки.
- 41. Учитывая определенную специфичность в технологии приготовления, характере и уровне бактериальной обсемененности, все кулинарные изделия по способу кулинарной обработки и для удобства осуществления микробиологического контроля условно делятся на девять групп:
- 42. Основной микробиологический контроль на кулинарном производстве включает контроль готовой продукции.
- 43. На судах, где производится мясо краба и креветки (криля), систематически анализируются полуфабрикаты после расфасовки перед заморозкой (1 раз в неделю) и вареномороженый продукт после упаковки (ежедневно).
- 44. Микробиологические анализы готовой кулинарной продукции проводятся с определенной периодичностью:
- 45. Исключение представляют сырые замороженные полуфабрикаты (VI группа), которые контролируются только при дополнительном контроле.
- 46. Основной контроль включает определение в готовых продуктах количества мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов, наличие бактерий группы кишечных палочек, золотистых стафилококков, сальмонелл, для некоторой продукции - бактерий рода протея, для продуктов, упакованных под вакуумом, - сульфитредуцирующих клостридий (Таблица № 3).
- 47. Микробиологический контроль сырья и полуфабрикатов при производстве продукции из морских беспозвоночных (криля и крабов) на судах проводится согласно Таблице № 4.
- 48. При обнаружении повышенной бактериальной обсемененности готового продукта, наличии в нем санитарно-показательных микроорганизмов необходимо в первую очередь визуально оценить санитарное состояние производства, проверить режим технологического процесса, температуру хранения, сроки реализации, провести повторный микробиологический анализ готовой продукции.
- 49. Если при повторном исследовании будет обнаружена повышенная обсемененность продукта, то с целью обнаружения и устранения источника бактериального загрязнения проводят дополнительный микробиологический контроль. При этом анализируются сырье (Таблица N 2), полуфабрикаты (Таблица № 19), вспомогательные материалы (Таблица N 20) и выполняются санитарные анализы (Таблица № 1). В Таблице № 5 приводятся данные дополнительного микробиологического контроля сырья и полуфабрикатов при производстве крабовых палочек.
- 50. При микробиологическом контроле производства пасты, мяса криля вареномороженого, крабовых конечностей и мяса крабового варено-мороженого в случаях несоответствия результатов контроля сырья показателям, приведенным в Таблице № 14, проверяют режим, условия и время хранения сырца до обработки, санитарное состояние сырьевых площадок, бункеров. Для переработки используют криль, хранившийся на палубе не более 4 часов при температуре не выше 7°С, крабов не более 3 часов.
- 51. При повышенной контаминации криля, белка-коагулята и мяса крабов и крабовых конечностей после варки проверяют качество срывки панциря у крабов, режим термической обработки криля, крабов, качество воды в процессе варки ракообразных, периодичность замены воды, качество санитарной обработки крабоварочных машин и варильников для криля.
- 52. Особое внимание уделяют ручной разделке крабовых конечностей (при выработке мяса крабового варено-мороженого), при этом ужесточают режим мойки и дезобработки разделочных досок, ножей и ножниц. При изготовлении пасты проводят тщательную санобработку размельчителя белка-коагулята.
- 53. При повышенной бактериальной обсемененности мяса криля или мяса крабов перед заморозкой проверяют качество мойки и сортировки мяса, качество воды, санитарное состояние оборудования и инвентаря (шелушилок, центрифуг, щелевого барабана, корзин, металлических форм и др.), принимают срочные меры по сокращению нахождения вареного полуфабриката на линии до заморозки.
- 54. Большое значение для сохранения качества варено-мороженой продукции из ракообразных имеет соблюдение режима хранения (не выше минус 18°С).
- 55. При неправильном хранении паста приобретает селедочный запах, не исчезающий после тепловой обработки.
- 56. Более высокое качество пасты обеспечивается при размораживании при пониженных температурах от 4°С до 8°С в течение 20-24 часов.
- 57. Партии пасты, варено-мороженого мяса краба, криля и других морских беспозвоночных с повышенной обсемененностью направляются на производство консервов или кулинарных изделий с термической обработкой.
- 58. С целью предохранения от развития токсинообразующих микроорганизмов в продуктах, упакованных под вакуумом, необходимо хранить их при температуре ниже 0°С.
- 5. Контроль продукции горячего и холодного копчения
- 59. Горячее копчение - это процесс, при котором тепловая обработка рыбы производится при температуре выше 60°С. Продукция горячего копчения относится к скоропортящейся, так как является благоприятной средой для развития микроорганизмов.
- 60. При холодном копчении тепловая обработка рыбы производится при температуре до 40°С. Низкая влажность продукта (массовая доля влаги - не выше 66 %), содержание соли от 6 % до 8 % и антисептические вещества, содержащиеся в коптильном дыму, делают продукцию более стойкой в хранении, чем продукцию горячего копчения.
- 61. Основной микробиологический контроль рыбы горячего и холодного копчения представлен в Таблице № 6.
- 62. Контролю подвергается готовая продукция горячего копчения: рыба, рулеты, колбасы, рыба копчено-мороженая, рыба с добавлением специй, продукция холодного копчения, ассорти рыбное, ветчина, фарш балычный, балычные изделия в нарезку и рыба с добавлением пряностей.
- 63. Контроль включает определение количества мезофильных аэробных и факультативноанаэробных микроорганизмов, наличия бактерий группы кишечных палочек, золотистых стафилококков, сульфитредуцирующих клостридий, сальмонелл, а также по эпидпоказаниям парагемолитических вибрионов.
- 64. Кроме анализа готовой продукции, основным контролем предусматривается проведение санитарно-микробиологических анализов (Таблица № 1).
- 65. В случае стойкой повышенной обсемененности проводится дополнительный контроль, включающий анализы сырья после разделки и мойки, полуфабрикатов по технологическому процессу (Таблица № 19) и вспомогательных материалов (Таблица № 20).
- 66. Для определения источника обсеменения повторно контролируется санитарное состояние производства.
- 6. Контроль соленой продукции
- 1. контроль пресервов
- 67. Пресервы - это вид соленых рыбных продуктов, упакованных в герметически закрытую тару с добавлением антисептика, с ограниченным сроком хранения и температурой хранения.
- 68. Пресервы с учетом технологии приготовления и уровня бактериальной обсемененности для удобства осуществления микробиологического контроля условно разделены на три группы.
- 69. К I группе относятся пресервы пряного и специального посола, ко II-пресервы из рыбы и морских беспозвоночных в масле, соусах, заливках и маринадах, к III-пресервы пастообразные.
- 70. Основной микробиологический контроль пресервов включает: контроль санитарного состояния производства с обязательным ежедневным визуальным осмотром сырья, вспомогательных материалов, цеха и выполнение анализов пресервов II и III групп.
- 71. В пресервах выявляют количество мезофильных аэробных и факультативноанаэробных микроорганизмов, наличие бактерий группы кишечных палочек, сальмонелл (Таблица № 7).
- 72. Дополнительный микробиологический контроль пресервов проводят, если в пресервах была обнаружена стойкая повышенная обсемененность. Для выявления источника обсеменения определяют качество сырья (Таблица № 2), в том числе соленого полуфабриката (Таблица № 19), анализируют вспомогательные материалы, входящие в рецептуру данного изделия (Таблица № 20), а также проводят более подробные микробиологические анализы пресервов (Таблица № 8), повторяют санитарно-микробиологические анализы (Таблица № 1).
- 73. Пресервы I группы исследуют только при дополнительном контроле - по требованию заказчика и по эпидемиологическим показаниям (Таблица № 8), а также по решению заведующего лабораторией, если пресервы были приготовлены с различными нарушениями.
- 74. При повышенной обсемененности соленого полуфабриката его тщательно моют или отмачивают в воде, соответствующей СанПиН МЗ и СЗ ПМР 2.1.4.1074-07 «Питьевая вода. Гигиенические требования к качеству воды централизованных систем питьевого водоснабжения. Контроль качества». При неблагополучных санитарных анализах проводят внеплановую санитарную обработку оборудования.
- 2. контроль соленой, пряной, маринованной рыбы (бочковой)
- 75. Если доброкачественность соленой продукции вызывает сомнение, ее подвергают микробиологическим исследованиям.
- 76. Контроль включает определение количества мезофильных аэробных и факультативноанаэробных микроорганизмов, наличия бактерий группы кишечных палочек. По требованию заказчика, по эпидемиологическим показаниям дополнительно определяют сальмонеллы.
- 77. Для снижения обсемененности соленой продукции при использовании ее в качестве полуфабриката для производства пресервов, кулинарной и вяленой продукции ее рекомендуется промыть в соленом растворе или свежеприготовленном тузлуке. Для борьбы с пороками соленой рыбы по согласованию с администрацией организации производят обработку рыбы в уксусно-соляном растворе.
- 78. Микробиологический контроль соленой, пряной, маринованной рыбы представлен в Таблице № 9.
- 7. Контроль производства вяленой продукции
- 79. Учитывая определенную специфичность в технологии приготовления вяленой рыбы, характер и уровень ее бактериальной обсемененности, вся вяленая продукция для удобства осуществления микробиологического контроля делится условно на две группы.
- 80. К I группе относятся вяленая рыба и морские беспозвоночные, ко II-провесная (подвяленная) рыба.
- 81. При основном микробиологическом контроле анализируется готовая продукция II группы и санитарное состояние производства (Таблица № 1). В рыбе провесной (подвяленной) выявляют количество мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов, наличие бактерий группы кишечных палочек, сальмонелл (Таблица № 10).
- 82. Готовая продукция I группы анализируется только при дополнительном контроле, по решению заведующего лабораторией, при выявлении нарушений при производстве. Кроме указанных выше микроорганизмов, в вяленой продукции I группы определяется наличие сульфитредуцирующих клостридий и плесневых грибов (Таблица № 10).
- 83. При стойкой повышенной обсемененности готовой продукции проводится дополнительный микробиологический контроль. По ходу технологического процесса анализируют сырье (Таблица № 2), полуфабрикаты (Таблица № 19), а также воду для отмочки, соль, тузлук (Таблица № 20), повторно контролируют санитарное состояние помещений, оборудования, инвентаря и рук работниц на укладке.
- 8. Контроль белковых продуктов, сушеной рыбы и морских беспозвоночных
- 84. К белковым пищевым продуктам относятся бульонные кубики, гидролизаты, сухие супы и другие.
- 85. При основном микробиологическом контроле анализируется готовая продукция и санитарное состояние производства.
- 86. В готовой продукции определяют количество мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов, бактерий группы кишечных палочек, наличие золотистых стафилококков, сульфитредуцирующих клостридий, сальмонелл и по эпидемиологическим показаниям парагемолитических вибрионов.
- 87. Нормативы обсемененности белковых продуктов, сушеной рыбы и нерыбных объектов морского промысла представлены в Таблице № 11.
- 88. Если обнаружена стойкая повышенная бактериальная обсемененность продуктов, для выявления источника обсеменения проводят дополнительный контроль, анализируя сырье (Таблица № 2), полуфабрикаты (Таблица № 19) и вспомогательные материалы (Таблица N 20). При повышенной обсемененности пасты и бульонных кубиков анализируют гидролизат, при повышенной обсемененности супов контролируют пищевой рыбный порошок, рыбную пульпу (Таблица № 12).
- 9. Контроль производства икры
- 89. Икорные продукты относятся к числу скоропортящихся.
- 90. Основной микробиологический контроль включает определение общей бактериальной обсемененности и бактерий группы кишечных палочек в икре после ее укладки в банки или бочки (Таблица № 13). Санитарное состояние цехов контролируется ежедневно визуально. Эффективность проводимой санитарной обработки оценивается путем систематических микробиологических анализов (Таблица № 1).
- 91. Микробиологический контроль охватывает производство следующих икорных продуктов:
- 92. При стойкой повышенной обсемененности икры после укладки необходимо провести дополнительный контроль. Для этого необходимо выполнить расширенный микробиологический анализ готовой продукции (Таблица № 14). Для выявления источника обсеменения сделать анализы полуфабрикатов по ходу технологического процесса (Таблица № 15), анализы вспомогательных материалов (Таблица № 20) и провести дополнительные санитарно-микробиологические анализы (Таблица № 1).
- 93. Бактериологический анализ готовой продукции проводится в случаях:
- 94. При повышенной общей бактериальной обсемененности и отсутствии условно-патогенной микрофлоры икра подлежит срочной реализации или направляется на пастеризацию.
- 95. В случае обнаружения в зернистой икре бактерий группы кишечных палочек икру можно подвергнуть пастеризации.
- 96. В случае обнаружения золотистых стафилококков в готовом продукте партия исследуется на количественное содержание золотистых стафилококков.
- 97. Очистка, мойка аппаратуры, оборудования, инвентаря должна производиться сразу же по окончании работы с обязательной их разборкой не реже одного раза в смену. Санитарно-профилактический день (1 раз в неделю) является обязательным.
- 98. Микробиологический контроль качества мойки и дезинфекции оборудования осуществляется согласно схеме (Таблица № 1).
- 99. Процесс производства икры почти на всех этапах связан с применением ручного труда. В связи с этим очень важным является широкое использование холодильных установок по всей цепи технологического процесса икорного производства, соблюдение правил личной гигиены.
- 10. Контроль продуктов из водорослей
- 100. Продуктами переработки водорослей, используемыми в пищевой промышленности, являются агар, агароид, альгинат натрия, фурцеллярин. Водоросли могут использоваться в пищу также в натуральном виде, как, например, морская капуста.
- 101. Микробиологический контроль на водорослевой организации производится периодически производственной лабораторией при выборочных проверках этих организаций учреждениями Госсанэпидслужбы.
- 102. Контроль включает микробиологические анализы готовой продукции, определение общего количества мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов и плесневых грибов (Таблица № 16).
- 103. В случае превышения нормативных показателей для определения источников микробиологического загрязнения контролируют сырье и полуфабрикаты по ходу технологического процесса (Таблицы N17, № 18 и № 19) и санитарное состояние технологических линий и помещений цехов (Таблица N1).
- 104. Для снижения загрязнения механическими примесями и первоначальной обсемененности водорослей следует увеличивать периодичность сменяемости воды в машинах для мойки и продолжительность процесса мойки. Так как одним из источников обсеменения студня является оборотная вода, необходимо использовать ее только после обеззараживания. В альгинатном производстве следует предупреждать застойные явления в трубопроводах по ходу технологического процесса.
- 11. Контроль полуфабрикатов при производстве пищевой продукции из рыбы и морских беспозвоночных
- 12. Контроль вспомогательных материалов
- 106. Вспомогательные материалы анализируются при дополнительном контроле для выяснения источника и причин повышенного обсеменения готового продукта (Таблица № 20). При поступлении в организацию и ежедневно осуществляется визуальный контроль.
- 107. При высокой обсемененности овощей их обжаривают. При повышенной обсемененности овощного сырья усиливают его термическую обработку, т.е. направляют на изготовление соусов. Проверяют также режим хранения овощей. Овощное сырье с измененными органолептическими свойствами, имеющее затхлый запах, а также следы плесневения, для производства не допускается.
- 108. При обнаружении золотистых стафилококков в растительном масле его подвергают прогреванию при 120°С в течение 30 минут. Одновременно проводят тщательную санитарную обработку маслопроводов. Для снижения обсемененности сушеных овощей, крупы, желатина, агара их тщательно промывают, дают воде стечь, подсушивают, а крупу после промывки варят. Муку пассируют. Такую муку можно использовать для панировки при обжарке рыбы и для выпечки кулинарных изделий. При высокой обсемененности соли ее прокаливают при температуре 150°С 15 минут или при 100°С 30 минут.
- 109. Яйца перед употреблением моют сначала теплой водой с добавлением 1 %-2 % кальцинированной соды, затем 0,5 % раствором хлорамина и ополаскивают теплой водой. Мойка яиц производится в специально выделенном месте в сырьевом отделении.
- 13. Отбор проб и подготовка их к анализу
- 110. Отбор проб производят согласно ГОСТ 26668-85 «Пищевые и вкусовые продукты. Методы отбора проб для микробиологических анализов», утвержденных Приказом Министерства юстиции Приднестровской Молдавской Республики от 29 ноября 2002 года № 483 «О введении в действие межгосударственных стандартов на территории Приднестровской Молдавской Республики с ГОСТ 25749-83 по ГОСТ 26858-86» (регистрационный № 1892 от 5 декабря 2002 года) (САЗ 02-49). В случае отсутствия норм отбора проб на какой-то конкретный вид продукции, объем, массу пробы берут в соответствии с нормативно-технической документацией на этот продукт и настоящей Инструкцией.
- 111. Для микробиологических анализов пробы отбирают до взятия проб для физикохимических и органолептических анализов.
- 112. Количество единиц упаковки, подлежащих вскрытию, устанавливается действующими стандартами, ГОСТ, ТУ на соответствующие продукты. Если на продукты отсутствуют стандарты или ТУ, вскрывают 5 % единиц упаковки от общего их количества в партии, но не менее 5 (пяти) единиц.
- 113. Перед отбором пробы готовой продукции необходимо осмотреть всю партию, затем вскрыть отдельные единицы упаковки и, дав органолептическую оценку (внешний вид, цвет, запах, консистенция, вкус), отобрать пробу.
- 114. Пробы для микробиологических анализов отбирают стерильным инструментом: ножом, ложкой, щупом, пинцетом, пробоотборником в стерильную посуду, закрытую двумя слоями бумаги и обвязанную бечевой, или упаковывают в стерильную бумагу.
- 115. От продукции в потребительской таре в мелкой расфасовке пробы отбирают в количестве одной или нескольких единиц в зависимости от массы или объема потребительской упаковки.
- 116. От продукции в транспортной или потребительской таре больших размеров или неупакованной пробы отбирают из разных мест с различной глубины, включая поверхность.
- 117. От жидкой, пастообразной продукции после перемешивания отбирают часть пробы в стерильную емкость пробоотборником или ковшом с длинной ручкой.
- 118. От сыпучих продуктов отбор производят после перемешивания их из различных точек. От сыпучих материалов, упакованных в мешки, пробы отбирают стерильным щупом, стараясь охватить все слои.
- 119. От продуктов смешанной консистенции пробы отбирают так, чтобы в них входили все компоненты в том соотношении, в котором они находятся в продукте.
- 120. Если пробы предусмотрено исследовать за пределами лаборатории организации, составляется акт отбора проб пищевых продуктов по форме № 342/у, утвержденной Приказом МЗ и СЗ ПМР от 19 января 2009 года № 32 «Об утверждении учетных форм санитарно-профилактических учреждений», в котором указывают наименование продукта, номер партии, номер образца и дату отбора.
- 121. Для скоропортящихся продуктов интервал во времени между отбором образцов и анализом должен быть сокращен до минимума. Такие образцы можно хранить при температуре от 0°С до 4°С не более 6 часов. В случае отбора проб в ходе технологического процесса интервал во времени между отбором проб и исследованием также должен быть максимально сокращен.
- 122. Подготовку проб, разведения продуктов готовят согласно ГОСТ 26669-85 «Пищевые и вкусовые продукты. Подготовка проб для микробиологических анализов», утвержденных Приказом Министерства юстиции Приднестровской Молдавской Республики от 29 ноября 2002 года № 483 «О введении в действие межгосударственных стандартов на территории Приднестровской Молдавской Республики с ГОСТ 25749-83 по ГОСТ 26858-86» (регистрационный № 1892 от 5 декабря 2002 года) (САЗ 02-49). Перед анализом из всей отобранной пробы подготавливают однородную массу путем измельчения, перемешивания, растирания. Образцы измельчают ножницами, скальпелем в электрических гомогенизаторах (микроизмельчителях), в ступках. Выбор способа измельчения зависит от вида продукта, его консистенции. Растирание продуктов твердой консистенции успешно производится с помощью стерильного кварцевого песка.
- 123. Продукты, содержащие жиры, нагревают на водяной бане, в термостате или в сушильном шкафу при температуре от 40°С до 45°С и перемешивают.
- 124. Замороженные продукты предварительно размораживают до температуры внутри тела рыбы или куска от 0°С до 1°С.
- 125. Навеску отбирают в количестве 10 г из усредненной подготовленной пробы и добавляют к ней постепенно 90 см3 жидкости для разведения, получая, таким образом, исходное разведение (10-1). Полученную взвесь хорошо перемешивают или взбалтывают и оставляют при комнатной температуре от 3 до 5 минут.
- 126. Исследуют надосадочную жидкость. При необходимости приготавливают последующие разведения, при этом используют каждый раз новую пипетку. Для пищевых продуктов жидкой и полужидкой консистенции 1 см3 исследуемого продукта вносят в 9 см3 стерильной жидкости для разведения, получая исходное разведение (10-1). Для исследования на сальмонеллы и парагемолитические вибрионы пробы сырья и продукции из гидробионтов отбирают с частью кишечника и жабр. Из усредненной пробы отбирают навеску в 25 г.
- 127. В основном продукты разводят в пептонно-солевом или физиологическом растворе (изотоническом растворе хлорида натрия), если продукты содержат более 6 % соли в 0,1 % водном растворе пептона (пептонной воды). Разведение мясных и молочных продуктов готовят на физиологическом растворе.
- 128. Массу пробы можно определять и объемным методом. Для этого берут специально подготовленные стаканы, на стенки которых наносится нарезка - черта на уровне 100 см3. В стакан наливают 90 см3 стерильной жидкости для разведения. Среднюю пробу размельченного продукта вносят в стаканы в количестве, обеспечивающем подъем жидкости до уровня нанесенной черты по нижнему мениску, получая разведение 10-1 .
- 14. Отбор образцов и подготовка к анализу сырья (свежей, охлажденной и мороженой рыбы, морских беспозвоночных, молок, икры) и полуфабрикатов
- 129. Мелкие рыбу, нерыбные объекты морского промысла, ястыки, молоки отбирают в количестве от 3 до 10 штук из разных мест исследуемой партии во взвешенную стерильную колбу, вновь взвешивают и по разности весов устанавливают массу отобранной пробы. Затем наливают стерильную жидкость в таком количестве, чтобы получить разведение 1:10. Если это не удается, учитывают в дальнейшем расход смывной жидкости.
- 130. Крупную рыбу и крупные экземпляры нерыбных объектов морского промысла отбирают в количестве не более 3 (трех) штук. От каждого экземпляра из нескольких мест вырезают кусочки с кожей и мышцами, не затрагивая кишечник (за исключением отбора проб на определение парагемолитических вибрионов), площадью около 4 см2, толщиной 4 мм-5 мм и помещают в колбу. Далее поступают так, как при исследовании мелких объектов. Допускается с крупных экземпляров рыб, молок и ястыков для определения общего микробного числа делать смывы тампоном, смоченным стерильной жидкостью, с разных мест поверхности общей площадью 100 см2. Затем тампон погружают в емкость, содержащую 100 см3 стерильной жидкости, встряхивают 2-3 минуты, и приступают к анализу.
- 131. Отбор средней пробы икры-сырца в ходе технологического процесса производится из трех мест обследуемой партии общей массой около 100 г.
- 132. Разрезанные и посоленные ястыки исследуют путем отбора 2-х или 3-х кусочков из разных мест общей массой 100 г.
- 133. Рыбу, объекты морского промысла после разделки и мойки отбирают небольшими кусками или вырезают небольшие кусочки от больших кусков массой не более 300 г (молоки - не более 100 г).
- 134. Пробы от мороженой рыбы в целом виде или от замороженных сырых полуфабрикатов, в т.ч. молоки и икру, отбирают от 3-х блоков (мест) по 2-3 кусочка (икру и молоки около 100 г). Отобранную пробу дефростируют перед приготовлением навески при температуре 2°С-5°С. Навеску отбирают сразу после размораживания, но не позднее, чем через 18 часов от начала дефростации. Продукты однородной консистенции допускается размораживать при температуре от 18°С до 20°С в течение 1 часа или в термостате при температуре 35°С не более 15 минут.
- 135. Образцы мороженых фаршевых изделий (мороженый фарш) отбирают из трех брикетов (мест) по 2-3 кусочка из поверхностных слоев и внутренней части массой около 200 г в банку. Пробы перед анализом полностью размораживают при температуре от 2°С до 5°С в той емкости, в которой были доставлены в лабораторию. Пасту допускается размораживать в термостате при 35°С .
- 136. Пробы рыбного фарша, приготовленного на производстве, отбирают из разных мест общей массой около 200 г.
- 137. Икра до пастеризации отбирается в количестве около 100 г.
- 15. Отбор проб и подготовка к анализу рыбной кулинарии
- 138. Общая масса отобранной пробы должна составлять около 300 г. Если масса продукта в потребительской таре находится в этих пределах, то берут одну единицу упаковки из попавших в выборку и используют ее содержимое для анализа. Если масса продукта в потребительской таре больше массы пробы (то есть более 300 г), берут часть содержимого упаковки из разных мест.
- 139. Пробы гомогенизируют или растирают и отвешивают навеску 10 г для получения десятикратных разведений.
- 140. При исследовании пастообразных продуктов, содержащих жир, используемую для приготовления гомогената и разведений жидкость необходимо прогреть до 40°С. Отобранную пробу тщательно перемешивают, отбирают 10 г в 90 см3 стерильной жидкости для приготовления последовательных разведений.
- 141. Колбасные изделия отбирают в количестве от одного до 3-х экземпляров в зависимости от размеров в стерильную бумагу. Перед анализом поверхность изделий в оболочке протирают и фламбируют спиртом. Из 3-х штук мелких колбасных изделий или одного крупного батона берут пробу без оболочки в количестве не менее 300 г. Для этого вскрывают оболочку, продольно разрезают батон на две половины и, отступая от края примерно 5 см, из боковых и центральных частей половины батона вырезают куски.
- 142. Для приготовления кулинарных изделий к исследованию можно пользоваться также объемным методом.
- 16. Отбор проб и подготовка к анализу копченой рыбы и продуктов копчения
- 143. Пробы готовой продукции (рыба целиком неразделанная, разделанная, куски, тушка, балычок и т.д.) отбираются после упаковки в тару из трех единиц транспортных упаковок (ящиков) общей массой не более 500 г. Если продукция находится в потребительской таре весом менее 500 г (полиэтиленовых мешках, коробочках, металлических или полимерных банках), то для анализа отбирается 1-3 единицы упаковки без нарушения ее целостности так, чтобы масса пробы не превышала 300 г. Перед анализом банку необходимо вымыть, просушить, металлическую - обжечь спиртом, полимерную - обтереть спиртом, полностью вскрыть, все содержимое измельчить.
- 144. Из крупной рыбы (от 1 до 3 штук), рулетов, теши, боковника и т.д. вырезают поперечные куски массой не более 300 г. Для анализа продукцию горячего копчения измельчают вместе с кожей, а холодного - без кожи, в том и другом случаях не затрагивая кишечник. Перед снятием кожи с рыбы необходимо поверхность объекта протереть спиртом. Берут навеску 10 г и вносят в 90 см3 жидкости для разведений.
- 17. Отбор проб и подготовка к анализу пресервов
- 145. Пробы пресервов отбирают через 2 часа после закатки банок. Для анализа берут 2 банки. Каждая банка анализируется в отдельности.
- 146. При анализе пресервов пряного или специального посола пробу отбирают из тузлука. Предварительно пресервы тщательно встряхивают. Из пресервов в масле, соусах, где, как правило, небольшое количество жидкой фазы, содержимое банки смешивают с равным количеством 0,1 % раствора пептонной воды, которую учитывают при анализе, перемешивают, затем готовят десятикратные разведения. Из пастообразных пресервов отбирают навески по 10 г, которые вносят в 90 см3 жидкости для приготовления разведений.
- 18. Отбор проб и подготовка к анализу соленой, пряной, маринованной рыбы (бочковой)
- 19. Отбор проб и подготовка к анализу вяленой рыбы
- 20. Отбор проб и подготовка к анализу икорной продукции
- 149. Отбор проб икры, расфасованной в бочки, проводят щупом из верхнего, среднего и нижнего слоев. Для анализа отбирают до 3 % единиц расфасовки, но не менее трех бочек. Общая масса среднего образца должна быть около 100 г.
- 150. Для выборки икры, расфасованной в металлические банки с надвигающимися крышками вместимостью от 500 см3 и более, отбирают по ассортименту (осетр, белуга, севрюга) по 3 банки разных переделов и составляют среднюю пробу массой 50 г.
- 151. Отбор зернистой и паюсной икры, идущей на экспорт, производят из трех банок одного передела выборочно по виду обработки, расфасовки, консерванту от каждых пяти дат выработки общей массой 50 г. От навески 50 г передается 25 г для исследования на сальмонеллы.
- 152. При расфасовке икры в металлическую, стеклянную или другую тару вместимостью до 300 см3 отбирают по 1 единицы расфасовки.
- 153. Пастеризованная икра берется на анализ по каждому виду тары и по ассортименту в количестве около 100 г (3 одноунцовые банки, 2 двухунцовые и 1 трехунцовая). Одноунцовая банка 26 г, двухунцовая - 56 г, трехунцовая - 112 г. При этом как из трех банок, так и из двух составляются средние пробы.
- 154. Ястычную икру (соленую, вяленую, копченую) в потребительской таре, полиэтиленовых мешках или картонных коробках отбирают, вырезая несколько кусочков из разных мест общей массой 100 г.
- 155. При определении сальмонелл в икре дополнительно берется навеска около 100 г.
- 156. Белковая икра отбирается в количестве 1 банки по каждому виду тары и по ассортименту.
- 157. Отобранную среднюю пробу тщательно перемешивают (икра - зерно целое), растирают (паюсная, белковая икра), измельчают (ястычная икра) и отбирают в стерильную емкость навески икры массой 10 г. К навеске добавляют 0,1 % раствор пептонной воды до 100 см3. Это будет исходное разведение (10-1) для определения общей бактериальной обсемененности. Подготовленный неразведенный продукт можно высевать непосредственно в питательные среды.
- 158. Жестяные или стеклянные банки с икрой, герметически укупоренные под вакуумом, перед анализом тщательно моют в теплой воде, высушивают и определяют герметичность по ГОСТ 8756.18-70 «Продукты пищевые консервированные. Методы определения внешнего вида, герметичности тары и состояния внутренней поверхности металлической тары», утвержденным Приказом Министерства юстиции Приднестровской Молдавской Республики от 19 февраля 2003 года № 74 «О введении в действие межгосударственных стандартов на территории Приднестровской Молдавской Республики (с ГОСТ 8709-82 по ГОСТ 9999-94)» (регистрационный № 2032 от 4 марта 2003года) (САЗ 03-10).
- 159. При исследовании туб с завинчивающимися пластмассовыми бушонами, банок из полимерных материалов герметичность определяют визуально.
- 21. Отбор проб и подготовка к анализу водорослей и их продуктов
- 160. Водоросли сушеные, агар пищевой, альгинат натрия отбирают из разных мест каждой вскрытой упаковки (вскрывают 5 % от партии) с поверхностных и глубинных слоев массой не более 200 г. Из подготовленной пробы отвешивают по 1 г в стерильные емкости (250 см3) и заливают стерильной жидкостью (99 см3), получая сразу разведение 10-2 и оставляют на 10 минут (водоросли) и на 30 минут (агар, альгинат натрия). Берется небольшая исходная навеска вследствие того, что в воде эти продукты набухают и увеличиваются в объеме. Такие продукты можно суспензировать вначале в стерильном пищевом масле в соотношении 1:10, затем 1,0 см3 полученной суспензии перенести в жидкость для разведения при постоянном помешивании, получая разведение 10-2.
- 161. Оборотную воду (для промывки студня) отбирают в количестве 10 см3 и вносят в 50 см3 питательной среды.
- 22. Отбор проб и подготовка к анализу вспомогательных материалов
- 162. Сыпучие материалы. Пробу соли, сахара, пряностей, сушеных овощей, муки, крупы и других сыпучих материалов, хранящихся в мешках, кулях, ящиках, пакетах, составляют из отдельных выемок, взятых от 5 % упаковок, но не менее чем из пяти единиц. Пробу соли, хранящейся навалом, составляют из отдельных выемок, взятых щупом в 6 различных местах бурта. Отобранные выемки тщательно вмешивают и квартованием выделяют среднюю пробу. Общая масса средней пробы составляет не более 300 г, исключение составляют пряности и сушеные овощи, масса проб которых 50 г и 100 г соответственно. В отличие от других материалов при анализе сушеных овощей для получения исходного разведения отвешивают 1 г, заливают 99 см3 пептонной воды или физиологического раствора. Для определения микробиологических показателей в сахаре и соли используют 10 % раствор сахара и 1 % раствор соли.
- 163. Пробу желатина, казеина пищевого и сухого цельного молока отбирают из 10 % упаковок обследуемой партии, но не менее чем из трех единиц расфасовки в количестве 50 г. Желатин после измельчения отвешивают в количестве 10 г, заливают 90 см3 0,1 % водного раствора пептона. После набухания в течение 1-1,5 часов при температуре от 5°С до 10°С желатин расплавляют на водяной бане (при температуре 40°С), постоянно взбалтывая до его полного растворения, и приступают к анализу.
- 164. Пробу казеина пищевого заливают 90 см3 2 % стерильного раствора двухзамещенного фосфорнокислого калия (K2HPO4), имеющего pH 8,4 и подогретого до 37°С. Колбу помещают в водяную баню с температурой 37°С на 20-25 минут, постоянно помешивая, затем приступают к анализу. Для первого разведения казеина используется 2 % раствор фосфорнокислого калия с pH 8,4, а для всех последующих разведений - с pH 7,4.
- 165. Томат-пасту отбирают в емкости из 5 % упаковок обследуемой партии, но не менее чем из 5 единиц.
- 166. Отварные овощи и вареные яйца отбирают в количестве от 100 г до 150 г.
- 167. Меланж. При исследовании партии меланжа отбирают 1 % банок (но не менее шести). После мойки банки фламбируют, вскрывают и отбирают из всех банок не менее 50 г продукта в емкость, в которой дефростируют. Пробу размораживают на водяной бане (при температуре от 48°С до 50°С) при частом встряхивании и сразу исследуют.
- 168. Яйца куриные (сырые). При исследовании партии яиц отбирают 1 % от партии (но не менее шести штук). Яйца обмывают теплой водой щеткой с мылом, дают воде стечь и погружают в этиловый спирт на 10 минут. После испарения спирта обжигают пламенем. На остром конце яйца делают стерильным скальпелем отверстие диаметром около 1 см и тоже обжигают. Содержимое яйца выливают в широкогорлую колбу и перемешивают с помощью стеклянных бус палочкой или пипеткой. Для определения сальмонелл берут 25 г (см3) гомогенизированной пробы.
- 169. Масло сливочное. Пробы отбирают из трех упаковок по 2 противоположных по диагонали куска массой каждый около 20 г (на расстоянии 3 см-5 см от края). Масло перед исследованием расплавляют в стеклянном стерильном сосуде на водяной бане при температуре от 40°С до 45°С, перемешивая до получения однородной консистенции. Жидкость для разведения также подогревается.
- 170. Пробы растительного масла отбирают стерильным черпаком из 10 % упаковочных единиц (контейнеры, бочки), но не менее чем из четырех общим объемом 200 см3. При наличии в партии менее четырех единиц упаковки пробу отбирают от каждой упаковки. При отборе проб из резервуара, оснащенного краном, кран сначала промывают, фламбируют смоченной в спирте и зажженной ватой, спускают часть масла и отбирают пробу.
- 171. Жидкие материалы - ланспиг, соус, заливку, тузлук и пастообразные отбирают в количестве около 100 см3 (г).
- 23. Методы микробиологических анализов
- 24. Определение количества мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов (КМАФАнМ)
- 173. Метод микробиологического анализа по определению количества мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов основан на подсчете колоний, выросших на питательных средах при термостатировании посевов при температуре 30°С с образованием колоний в течение 72 часов, видимых при увеличении в 2 раза.
- 174. Подготовленную пробу тщательно перемешивают. Взвесь отстаивают в течение 5 минут. Надосадочную жидкость используют для приготовления последующих разведений. 1 см3 материала из исходного разведения (10-1) переносят в пробирку с 9 см3 стерильного раствора для разведений, не прикасаясь к поверхности жидкости в этой пробирке, перемешивают новой стерильной пипеткой и содержимое в количестве 1 см3 переносят в следующую пробирку и т.д. В результате исследуемый продукт оказывается разведенным в 10, 100 и более раз. Степень разведения навески для высева на плотные среды выбирают так, чтобы общее количество колоний, выросших на чашке, колебалось в пределах от 30 до 300. В чашку Петри вносят по 1 см3 разведенного продукта или смыва, заливают расплавленным и остуженным до 45°С агаром (15 см3-20 см3) размешивают. После застывания агара чашки переворачивают и помещают в термостат при температуре 30°С на 72 часа. При необходимости допускается предварительный учет колоний через 48 часов с последующим подсчетом через 72 часа. Обработку результатов культивирования проводят согласно ГОСТ 26670-91 « Продукты пищевые. Методы культивирования микроорганизмов», утвержденных Приказом Министерства юстиции Приднестровской Молдавской Республики от 29 ноября 2002 года № 483 (регистрационный № 1892 от 5 декабря 2002 года) (САЗ 02-49) Количество микроорганизмов в 1 г (1 см3, см2) рассчитывают по формуле:
- 175. После инкубации подсчитывают все выросшие колонии на тех чашках, где их количество составляет от 15 до 300 колоний, при этом чашки располагают вверх дном на темном фоне. Подсчет производят при помощи лупы с увеличением от 4 до 10 раз или специального прибора для счета колоний.
- 25. Определение плесневых грибов и дрожжей
- 176. Метод основан на способности плесневых грибов и дрожжей, расти на селективных средах в аэробных условиях при термостатировании посевов при температуре 25°С.
- 177. По 1 см3 исходного разведения, полученного при определении общей бактериальной обсемененности, высевают в чашки Петри и заливают по 15 см3-20 см3 одной из питательных сред: сусло-агаром, Сабуро, синтетической с антибиотиками. Чашки вверх крышками ставят в термостат при температуре 25°С. Через 5 суток просматривают посевы.
- 178. Развитие плесневых грибов на питательных средах сопровождается появлением мицелия различной окраски.
- 179. Рост дрожжей сопровождается образованием выпуклых, блестящих, серовато-белых, кремовых колоний с ровным краем.
- 180. При необходимости для разделения колоний дрожжей и плесневых грибов проводят микроскопирование. Результаты микроскопирования оценивают по ГОСТ 10444.12-88 «Продукты пищевые. Метод определения дрожжей и плесневых грибов», утвержденным Приказом Министерства юстиции Приднестровской Молдавской Республики от 8 октября 2002 года № 404 «О введении в действие межгосударственных стандартов на территории Приднестровской Молдавской Республики»(регистрационный № 1823 от 22 октября 2002 года) (САЗ 02-43).
- 181. Для количественного подсчета отбирают чашки, на которых выросло от 15 до 150 колоний дрожжей и (или) от 5 до 50 колоний плесневых грибов.
- 182. При определении в некоторых продуктах наличия или отсутствия плесневых грибов высевают непосредственно продукт и его разведения в 5 см3-7 см3 питательной среды Сабуро. Посевы термостатируют при температуре 25 °C в течение 5 суток.
- 26. Определение бактерий рода протея
- 27. Определение бактерий группы кишечных палочек (колиформных бактерий)
- 184. Метод основан на способности бактерий группы кишечных палочек, сбраживать в среде Кесслер лактозу с образованием кислоты и газа. В этой группе определяются 5 родов энтеробактерий (E. coli, Citrobacter, Enterobacter, Klebsiella, Seratia).
- 185. Бактерии группы кишечных палочек (далее - БКГП) - это аэробные и факультативноанаэробные грамотрицательные, не образующие спор палочки, ферментирующие лактозу с образованием кислоты и газа при температуре 37°С в течение 24 часов (бродильная проба), не обладающие оксидазной активностью.
- 186. Для определения БКГП 10 г продукта и 10 см3 (1 г) исходного разведения продукта засевают во флаконы со 100 см3 и 40 см3- 50 см3 питательной среды соответственно. 1 см3 и 0,1 см3 и т.д. исходного разведения продукта засевают в пробирки с 5 см3 питательной среды. Засевается то количество продукта, в котором нормируется отсутствие бактерий группы кишечных палочек. Допускается засевать 1 г продукта в 8 см3-10 см3 питательной среды.
- 187. Для определения БКГП в смывной жидкости с оборудования и рук тампоны или марлевые салфетки опускают в пробирки с 5 см3 среды Кесслер. Посевы инкубируют при температуре 37°С. Через 18-24 часа из газ-положительных пробирок и колб со среды Кесслер проводят посев на плотную дифференциальную среду Эндо и инкубируют при температуре 37°С в течение 24 часов.
- 188. При наличии на среде Эндо колоний (красных с металлическим блеском и без него, розовых), характерных для группы кишечных палочек, производят их изучение. Из изолированных колоний готовят препараты, окрашивают по Граму и микроскопируют. При наличии грамотрицательных без спор палочек делают заключение о присутствии БКГП. Желательно при обнаружении грамотрицательных, не образующих спор палочек выполнить также оксидазный тест. Для этого колонии со среды Эндо наносят штрихом на фильтровальную бумагу, предварительно смоченную реактивом для определения цитохромоксидазы. В месте нанесения бактериальной массы бумага не изменяет цвета, если оксидазный тест отрицательный, и синеет в течение 1 минуты, если бактерии имеют оксидазу.
- 189. При обнаружении бесцветных (лактозоотрицательных) колоний на чашках с агаром Эндо во избежание пропуска патогенных бактерий семейства кишечных палочек указанные чашки должны передаваться в лаборатории санитарно-эпидемиологических станций для дальнейшего изучения.
- 28. Определение золотистых стафилококков
- 190. Метод основан на выявлении характерного роста бактерий на элективных средах, изучении морфологических свойств, постановке теста плазмокоагуляции. В пробирку с 6 см-7 см солевого рыбопептонного бульона (6,5 % NaCl) вносят 1 г продукта или 1 см3 разведения (10 -1). При исследовании продуктов, содержащих большое количество соли (свыше 5 %), дополнительно производят посев в 1 % глюкозный рыбопептонный бульон. Посевы помещают в термостат при температуре 37°С на 18-24 часа. Из сред обогащения (солевого, глюкозного бульонов) производят посев на элективные среды: желточно - или молочно-солевой агар. Посевы инкубируют при 37°C в течение 24 часов.
- 191. Подозрительные на стафилококки колонии (непрозрачные, золотистые, кремовые, эмалевые, лимонно-желтые, имеющие форму правильных дисков от 2 мм до 4 мм в диаметре, слегка выпуклые на молочно- и желточно-солевом агаре с радужным венчиком вокруг колоний, отсевают на скошенный агар и инкубируют при температуре 37°С 18-24 часов. Число колоний, взятых для идентификации, не должно быть менее пяти. Стафилококки положительно окрашиваются по Граму, имеют шарообразную форму и располагаются часто в виде скоплений, напоминающих гроздья винограда. С односуточной культурой ставят реакцию плазмокоагуляции.
- 192. Реакция плазмокоагуляции. В пробирку с 0,5 см3 плазмы (лучше кроличьей), разведенной изотоническим раствором хлорида натрия (физиологическим раствором) в пропорции 1:5 (1 см3 плазмы + 4 см3 физиологического раствора), вносят петлю суточной культуры стафилококка. Для контроля одну пробирку с плазмой оставляют незасеянной. Пробирки помещают в термостат при температуре 37°С. Учет результатов плазмокоагуляции проводят через 2 часа. Реакция считается положительной, если сгусток образовался в течение 24 часов.
- 193. Существуют дополнительные тесты идентификации золотистых стафилококков, которые используются, когда требуется подтверждение неясных результатов при наличии санитарно-эпидемиологического неблагополучия.
- 194. Дополнительные тесты включают: постановку реакций на термостабильную ДНКазу, лецитовителлазу, разложение маннита в анаэробных условиях, определение активности кислой фосфатазы.
- 195. В случае необходимости для определения количественного содержания коагулазоположительных стафилококков в 1 г продукта к 10 г подготовленной пробы прибавляют 90 см3 стерильной жидкости, тщательно перемешивают, оставляют на 3-5 минут. Из надосадочной жидкости готовят разведения 1:100, 1:1000. По 0,2 см3 исследуемого материала не менее чем из трех последовательных разведений высевают на поверхность подсушенных (в термостате) элективных сред и растирают шпателем (по 5 чашек Петри на одно разведение). Посевы термостатируют при температуре 37°С в течение 24-48 часов. Через 24 часа посевы просматривают и отбирают чашки, в которых выросло от 15 до 150 колоний, характерных для стафилококков. Отмечают типичные колонии и посевы вновь помещают в термостат на сутки. Через 48 часов из 3-5 типичных колоний готовят мазки, окрашивают по Граму и микроскопируют. Колонии подсчитывают. Находят общее арифметическое число колоний на пяти чашках одного разведения, умножают на 5 и степень разведения продукта (10, 100 и так далее).
- 29. Определение сульфитредуцирующих клостридий (сульфитвосстановителей)
- 196. Метод основан на способности клостридий вызывать почернение питательной среды определенного состава в результате образования сернистого железа.
- 197. Навеску продукта массой 1 г или его разведений 1:10 (0,1 г), 1:100 (0,01 г) вносят в пробирку с 10-13 см3 питательной среды: сульфитполимиксиновой или Вильсон-Блера, предварительно расправленной и остуженной до 45°С, или Китт-Тароцци.
- 198. Инкубацию проводят при температуре 37°С 20-24 часа. При наличии роста клостридий в средах Вильсон-Блера, сульфитполимиксиновой образуется почернение. Из среды Китт-Тароцци, где наблюдается рост, пастеровской пипеткой производят пересев на дно стерильной пробирки и заливают расплавленной средой Вильсон-Блера высоким столбиком. При росте сульфитредуцирующих клостридий в результате восстановления сернистокислого натрия происходит взаимодействие его с хлористым железом, среда чернеет за счет образования сернистого железа. Изготавливают мазки-препараты, окрашивают по Граму и микроскопируют. Сульфитредуцирующие клостридии представляют собой грамположительные палочки, располагающиеся в одиночку, попарно в виде цепочек или скоплений параллельных клеток (забором). При спорообразовании споры овальные или сферические, центральные, субтерминальные или терминальные. Сульфитредуцирующие клостридии каталазы не образуют, являются строгими анаэробами.
- 199. Каталазная реакция: к части культуральной жидкости добавляют 10 % раствор едкой щелочи или 10 % раствор соляной кислоты в таком количестве, чтобы питательная среда приобрела нейтральную реакцию (по индикаторной бумажке). Затем обезжиренной пипеткой 0,5 см3 жидкости переносят на профламбированное, обезжиренное и охлажденное до комнатной температуры предметное стекло, а затем другой пипеткой добавляют каплю 3 % раствора перекиси водорода. Если в течение 3 минут пузырьки газа не появились, считается, что микроорганизмы каталазы не образуют.
- 200. Отрицательная проба на каталазу свидетельствует о присутствии в среде облигатных анаэробных микроорганизмов.
- 201. Метод основан на способности бактерий рода сальмонелл на дифференциальнодиагностических средах образовывать специфические колонии и давать реакцию агглютинации с сальмонеллезными сыворотками.
- 202. К бактериям рода сальмонелл относятся грамотрицательные палочки с закругленными концами, длина варьирует от 1 мк до 3 мк, ширина от 0,5 мк до 0,6 мк. Сальмонеллы являются факультативными анаэробами. Оптимальная температура роста 37°С, реакция среды слабощелочная (pH от 7,2 до 7,4). Сальмонеллы подвижны.
- 203. Навеску продукта в количестве 25 г засевают в 100 см3 среды обогащения (магниевую или селенитовый бульон).
- 204. Посевы помещают на 18-20 часов в термостат при температуре 37°С.
- 205. На второй день из сред обогащения делают высев в чашки Петри на плотные дифференциально-диагностические среды: Висмут-сульфит агар (далее - BCA), среду Плоскирева, Левина или Эндо. Перед посевом среду необходимо подсушить в термостате. Чашки термостатируют при температуре 37°С в течение 15-18 часов со средами Эндо и Плоскирева и 48 часов со средой BCA.
- 206. На BCA сальмонеллы образуют черные (или коричневые) с металлическим блеском колонии, цвет среды под колониями черный. Исключение составляют S. paratyphi, S. cholerae suis и ряд других, растущих в виде мелких серовато-зеленых колоний с черным центром и без него. Кишечная палочка образует бесцветные, зеленоватые или серые колонии или не дает роста.
- 207. На среде Эндо колонии сальмонеллы бесцветные, слабо-розовые, выпуклые, блестящие. На средах Плоскирева и Левина колонии прозрачные, голубоватые, бледные или нежно-розовые.
- 208. С дифференциально-диагностических сред отсевают несколько колоний на трехсахарный агар с мочевиной или среду Клиглера с мочевиной. Посевы делают сначала штрихом по скошенной поверхности, а затем уколом (два раза) в глубину столбика. Посевы выдерживают в термостате при температуре 37°С 24 часа. Учитывают способность культуры ферментировать глюкозу, лактозу и мочевину. Для сальмонелл характерно разложение глюкозы с образованием газа. Лактозу и мочевину не разлагают. Готовая среда - трехсахарный агар с мочевиной имеет розовато-малиновый цвет. Отсутствие изменения цвета скошенной поверхности указывает на то, что лактоза и сахароза не разлагаются исследуемой культурой. Желтое окрашивание столбика, образование газа (разрывы) и сероводорода (почернение) указывает на рост бактерий из рода сальмонелл.
- 209. Желательно со среды Клиглера или с трехсахарного агара отсевать на короткий пестрый ряд, включающий скошенный агар, и среды Гисса с лактозой, глюкозой, маннитом, сахарозой, мальтозой, рыбо- или мясопептонным бульоном для определения индола и сероводорода. Под пробку с бульоном помещают бумажки, смоченные уксуснокислым свинцом для определения сероводорода и раствором щавелевой кислоты для определения образования индола. Посевы термостатируют при температуре 37°С в течение 24 часов.
- 210. Таким образом, к сальмонеллам относятся бактерии, не разлагавшие лактозу, сахарозу и мочевину, ферментирующие глюкозу, маннит и мальтозу с образованием газа, продуцирующие сероводород и не образующие индол. Для окончательного заключения у выделенных культур должны быть изучены серологические свойства.
- 211. Сальмонеллы обладают двумя основными антигенными комплексами. Различают жгутиковые (H) антигены и соматические (O). Антигенная структура сальмонелл расшифровывается с помощью монорецепторных H- и O-сывороток.
- 212. Серологические свойства изучают путем постановки реакции агглютинации на стекле односуточной культуры, выделенной с трехсахарного агара, с поливалентной агглютинирующей адсорбированной сальмонеллезной O-сывороткой. При получении положительной реакции на стекле с этой сывороткой проводят идентификацию с помощью монорецепторных агглютинирующих адсорбированных O-сывороток. При помощи поливалентной сальмонеллезной O-сыворотки устанавливается принадлежность исследуемой культуры к одной из серологических групп сальмонелл. Для определения серологического типа культур используют H-монорецепторные сыворотки первой и второй фаз.
- 213. Для реакции агглютинации с O-сыворотками берут односуточную культуру с верхней части, с H-сыворотками - с нижней части скошеного питательного агара.
- 214. В случае положительной реакции агглютинации с монорецепторными O-, H- сыворотками делают окончательный вывод о присутствии в исследуемом образце сальмонелл.
- 31. Определение спор мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов (термостабильных бацилл мезофилов)
- 215. Метод микробиологического анализа заключается в подсчете колоний путем высева в чашки Петри прогретого материала или учете роста при высеве определенного его количества в жидкие питательные среды и термостатировании посевов в аэробных условиях при температуре 30°С.
- 216. Подготовленную пробу кипятят в течение 5 минут.
- 217. Во время прогревания уровень воды в бане должен быть выше уровня питательной среды. После окончания прогрева пробу охлаждают до 40°С, делают ряд разведений и высевают в чашки Петри.
- 218. Пробу прогретой оборотной воды после промывки студня при производстве пищевого агара непосредственно вносят в рыбопептонный бульон. Посевы термостатируют при температуре 30°С 72 часа.
- 32. Определение парагемолитических вибрионов
- 219. Метод основан на выявлении типичных колоний на дифференциальнодиагностических средах определенного состава и установлении принадлежности бактерий к парагемолитическим вибрионам по морфологическим и биохимическим свойствам.
- 220. Для определения количества парагемолитических вибрионов в 1 г продукта делают высев из разведений.
- 221. Для приготовления разведений из усредненной пробы отбирают навеску массой 25 г и дополнительно растирают с кварцевым песком в стерильной ступке или гомогенизируют в размельчителе тканей. Добавляют 225 см3 0,1 % пептонной воды с 3 % хлорида натрия (разведение 10-1), размешивают, отстаивают в течение 5 минут, из надосадочной жидкости готовят последующие разведения. Чтобы получить высев, 0,1 г продукта засевают из разведения 10-1 по 0,2 см3 надосадочной жидкости на 5 чашек с плотной дифференциально-диагностической средой (далее - ДДА). Из разведения 102 высевают по 0,1 см3 на две параллельные чашки, что соответствует посеву по 0,001 г продукта на одной чашке. При необходимости засевают последующие разведения. Посевы инкубируют при температуре 37°С в течение 24 часов. Производят подсчет типичных колоний. На ДДА вибрионы образуют плоско-выпуклые полупрозрачные колонии круглой формы с ровными краями, влажной, гладкой блестящей поверхностью голубовато-зеленого цвета от 1 мм до 5 мм в диаметре. Результаты роста на ДДА оценивают следующим образом.
- 222. Отсутствие роста парагемолитических вибрионов на всех пяти чашках посева из разведения 10-1 означает, что в одном грамме парагемолитические вибрионы отсутствуют или содержатся в количестве менее 10 клеток. Обнаружение роста от 10 до 50 типичных колоний на 5 чашках с посевом из разведения 10-1 при отсутствии роста на двух чашках с посевом при разведении 10-2 указывает, что в 1 г продукта содержится от 100 до 500 жизнеспособных клеток парагемолитических вибрионов.
- 223. Для выявления присутствия парагемолитических вибрионов в 25 г продукта подготовленную пробу в количестве 25 г переносят в 100 см3 жидкой среды обогащения. Посевы помещают в термостат при 37°С. Через 18-24 часа производят пересев на плотную дифференциально-диагностическую среду. Чашки инкубируют при 37°С в течение 24 часов. Выявляют типичные колонии парагемолитических вибрионов.
- 224. Для подтверждения принадлежности выделенных на дифференциальнодиагностических средах микроорганизмов к парагемолитическим вибрионам проводят изучение морфологических свойств и ставят биохимические тесты.
- 225. Парагемолитические вибрионы - мезофильные грамотрицательные палочки, прямые или слегка изогнутые, не образующие спор, активно подвижны, содержат цитохромоксидазу, не расщепляют лактозу и сахарозу, растут на питательных средах с содержанием хлорида натрия от 3 % до 8 %, декарбоксилируют лизин, образуют индол, ферментируют (без газообразования) арабинозу, глюкозу, мальтозу, не образуют ацетилметилкарбинол.
- 226. Для идентификации бактерий делают пересев с ДДА в 1 % пептонную воду с 3 % хлорида натрия (рост на пептонной воде: помутнение с образованием нежной голубой пленки) и на ДДА.
- 227. Готовят мазки, окрашивают их по Граму и изучают морфологию клеток.
- 228. Подвижность определяют при микроскопировании фазовоконтрастным методом в раздавленной капле или при посеве уколом в полужидкий агар (0,25 % агара), содержащий 3 % хлорида натрия. Засевают односуточную бульонную культуру и инкубируют при температуре 37°С в течение 24 часов. Подвижные формы образуют диффузное помутнение, слабоподвижные вырастают по ходу укола.
- 229. Декарбоксилазную активность устанавливают в среде с лизином. Для этого делают посев в пробирки с этой средой по 0,1 см3-0,2 см3 односуточной культуры или по 2 петли агаровой культуры (1 пробирка с аминокислотой - лизином и 2 - контрольная). После посева в каждую пробирку добавляют по 0,5 см3 стерильного вазелинового масла, помещают в термостат при температуре 37 °C и наблюдают. Обычно реакция проходит через 24 часа. При отрицательной реакции происходит только окисление глюкозы. Среда становится желтой. Если микроорганизмы вырабатывают декарбоксилазу к аминокислоте, то после окисления глюкозы происходит подщелачивание среды, и она становится темно-фиолетовой. Парагемолитические вибрионы дают в тесте на лизин декарбоксилазную положительную реакцию.
- 230. Образование декарбоксилазы к лизину является отличительным признаком от образующих газ представителей рода Aeromonas, среди которых есть галофильные вибрионы.
- 231. Образование индола определяют путем посева односуточной культуры в 5 см3 среды (1 %-ная пептонная вода с 3 % хлорида натрия) в пробирках. Под пробкой помещают специально приготовленные бумажки на индол. Инкубируют при температуре 37°С в течение 24 часов. При росте парагемолитических вибрионов образуется индол, бумажки изменяют цвет.
- 232. Для определения цитохромоксидазы односуточную культуру засевают на поверхность щелочного агара (pH 8), содержащего 3 % хлорида натрия. Термостатируют при температуре 37°С в течение 18 часов. Затем наносят на выросшую культуру в чашке 1 каплю реактива для определения цитохромоксидазы или делают штрих из колонии на фильтровальной бумаге, смоченной этим реактивом. Если оксидазный тест положительный, через 1-3 минуты наблюдается окрашивание в ярко-синий цвет. Наличие цитохромоксидазы является отличительным признаком от семейства кишечных палочек, которые не обладают оксидазной активностью.
- 233. Отношение к лактозе и сахарозе определяют путем засева штрихом культуры по скошенной поверхности и уколом в столбик среды, содержащей 3 % хлорида натрия, лактозу, сахарозу и индикатор. Инкубируют при температуре 37°С в течение 18 часов. Парагемолитические вибрионы цвет среды не изменяют, газ не образуют (не расщепляют лактозу и сахарозу). Можно использовать среды Клиглера, Ресселя.
- 234. Для определения галофильных свойств исследуемую культуру засевают в 5 см3 1 %-ной пептонной воды (pH 7,8) без содержания и с содержанием 3 %, 8 %, 10 % хлорида натрия. Термостатируют посевы при температуре 37°С в течение 24 часов. Парагемолитические вибрионы активно развиваются в средах, содержащих 3 %, 8 % хлорида натрия, и не дают роста в средах, не содержащих хлорида натрия и содержащих 10 % соли и более.
- 235. Способность образования ацетилметилкарбинола (реакция Фогес-Проскауэра) определяют следующим способом. Исследуемую культуру засевают в глюкозофосфатный бульон Кларка с 3 % хлорида натрия, термостатируют при температуре 37°С в течение 24 часов. Затем к 1 см3 посева добавляют 0,6 см3 альфа-нафтола (6 % раствор в спирте) и 0,2 см3 40 %-ного раствора едкого калия (KOH), пробирку хорошо встряхивают и вновь помещают в термостат на 1 час. Так как парагемолитические вибрионы не образуют ацетилметилкарбинол, цвет среды не изменяется.
- 236. Для определения интенсивности кислотообразования (реакция Кларка) засевают исследуемую культуру в среду Кларка с 3 % хлорида натрия, термостатируют при температуре 37°С в течение 24-48 часов. При наличии роста добавляют 2-3 капли 0,04 % раствора метилового красного (0,04 г метилового красного растворяют в 40 см3 этилового спирта и 60 см3 дистиллированной воды), встряхивают и помещают в термостат на 1 час. При сильном кислотообразовании среда окрашивается в красный цвет, при слабом - в желтый. Парагемолитические вибрионы в 84 % случаев дают положительную реакцию.
- 237. Для определения ферментативной активности односуточную культуру засевают на среды Гисса с 1 % углеводов и с 3 % NaCl (пестрый ряд), инкубируют при температуре 37°С 18-24 часа. При расщеплении углеводов с образованием кислых продуктов распада цвет среды изменяется, при образовании газа последний собирается в поплавке. Парагемолитические вибрионы ферментируют без образования газа глюкозу, мальтозу, арабинозу.
- 238. Для вибрионов характерно расщепление глюкозы с образованием кислоты без газа как в анаэробных (в высоком столбике), так и в аэробных условиях на среде Хью-Лейфсона в пробирках. Определение типа расщепления глюкозы позволяет отличать вибрионы от сходных с ними по морфологии представителей рода Pseudomonas и Lomonomonus.
- 239. Для идентификации вибрионов можно использовать системы индикаторные бумажные (далее - СИБ).
- 33. Питательные среды и реактивы
- 240. Питательные среды готовят в эмалированной или стеклянной посуде. Если в технологии приготовления питательных сред не указаны условия растворения питательных сред или компонентов, то их растворяют при перемешивании в воде комнатной температуры до полного растворения не менее 15 минут и затем при необходимости нагревают. Необходимое значение pH питательных сред устанавливают в растворах комнатной температуры с помощью растворов с массовой концентрацией 10 г/дм3 гидроокиси натрия или 20 г/дм3 лимонной кислоты, или раствором соляной кислоты объемной концентрацией 25 см3 / дм3, прибавляя при перемешивании по каплям реактив к среде и определяя значение pH в периодически отбираемой пробе потенциометрически или с помощью индикатора. При подщелачивании среды щелочью значение pH после кипячения и стерилизации снижается примерно на 0,2, а при приготовлении сред с настоем печени - на 0,3-0,4. Поэтому при приготовлении сред устанавливают pH на 0,2-0,4 единиц выше заданного, кипятят, пока pH не понизится на 0,2-0,3, снова проверяют pH и стерилизуют в автоклаве. Обязательно проверяют pH после стерилизации. Готовые питательные среды хранят при комнатной температуре не более 3 суток и при температуре около 4°С не более одного месяца, если нет специальных указаний.
- 241. Растворы (жидкости) для приготовления разведений:
- 242. Питательные среды:
- 243. Приготовление реактивов, растворов:
Реквизиты документа
Полное наименование
Об утверждении Инструкции МЗ и СЗ ПМР № 5319-12 «Санитарно-микробиологический контроль производства пищевой продукции из рыбы и морских беспозвоночных»
Издатель
Министерство здравоохранения и социальной защиты
Вид акта
Приказ
№ документа
№ 486
Редакция
Первоначальный документ
Дата документа
18.09.2012
Источник оф. опубликования
САЗ 12-42
Скачать
Доступно по тарифу
К карточке документа
Карточка документа
Об утверждении Инструкции МЗ и СЗ ПМР № 5319-12 «Санитарно-микробиологический контроль производства пищевой продукции из рыбы и морских беспозвоночных»
Тип:
Приказ
Номер:
№ 486
Статус:
Опубликован
Редакция:
Первоначальный документ
Организация:
Министерство здравоохранения и социальной защиты
Дата:
18.09.2012